| 摘要 | 第2-4页 |
| Summary | 第4-5页 |
| 缩略词表 | 第6-9页 |
| 第一章 文献综述 | 第9-22页 |
| 1.1 引言 | 第9页 |
| 1.2 植物组织培养研究进展 | 第9-11页 |
| 1.3 小麦组织培养进展 | 第11-13页 |
| 1.3.1 小麦幼胚的培养 | 第11页 |
| 1.3.2 小麦成熟胚的培养 | 第11-12页 |
| 1.3.3 小麦花药的培养 | 第12-13页 |
| 1.3.4 小麦茎尖的培养 | 第13页 |
| 1.4 小麦遗传转化的方法 | 第13-16页 |
| 1.4.1 基因枪法 | 第13-14页 |
| 1.4.2 农杆菌介导法 | 第14-15页 |
| 1.4.3 花粉管通道法 | 第15-16页 |
| 1.5 作物耐盐性研究进展 | 第16-20页 |
| 1.5.1 作物耐盐机制 | 第16-18页 |
| 1.5.2 耐盐相关基因 | 第18页 |
| 1.5.3 耐盐基因的发掘 | 第18-19页 |
| 1.5.4 小麦耐盐基因研究进展 | 第19-20页 |
| 1.6 研究目的与意义 | 第20-21页 |
| 1.7 技术路线 | 第21-22页 |
| 第二章 小麦成熟胚再生体系的优化 | 第22-30页 |
| 2.1 材料与方法 | 第22-23页 |
| 2.1.1 小麦品种 | 第22页 |
| 2.1.2 培养基及试剂配比 | 第22-23页 |
| 2.2 试验方法 | 第23-24页 |
| 2.2.1 种子灭菌 | 第23页 |
| 2.2.2 小麦成熟胚的切取 | 第23页 |
| 2.2.3 成熟胚愈伤组织的诱导 | 第23-24页 |
| 2.2.4 愈伤组织的分化 | 第24页 |
| 2.2.5 生根培养 | 第24页 |
| 2.2.6 统计方法 | 第24页 |
| 2.3 结果分析 | 第24-27页 |
| 2.3.1 2 ,4-D浓度对小麦愈伤诱导的影响 | 第24-25页 |
| 2.3.2 不同基因型对小麦愈伤诱导的影响 | 第25页 |
| 2.3.3 不同激素配比对愈伤组织分化的影响 | 第25-27页 |
| 2.4 讨论 | 第27-30页 |
| 第三章 农杆菌介导CL5527基因的遗传转化 | 第30-38页 |
| 3.1 材料与试剂 | 第30-32页 |
| 3.1.1 实验材料 | 第30页 |
| 3.1.2 实验试剂 | 第30-32页 |
| 3.2 试验方法 | 第32-34页 |
| 3.2.1 农杆菌的活化 | 第32页 |
| 3.2.2 农杆菌的检测 | 第32-33页 |
| 3.2.3 农杆菌侵染 | 第33-34页 |
| 3.3 结果与分析 | 第34-36页 |
| 3.3.1 农杆菌菌液检测 | 第34页 |
| 3.3.2 农杆菌浓度对愈伤生长的影响 | 第34-35页 |
| 3.3.3 头孢霉素对农杆菌抑菌效果的影响 | 第35-36页 |
| 3.4 讨论 | 第36-38页 |
| 第四章 耐盐基因CL5527在拟南芥中的功能验证 | 第38-47页 |
| 4.1 材料与试剂 | 第38页 |
| 4.1.1 实验材料 | 第38页 |
| 4.1.2 培养基配比 | 第38页 |
| 4.1.3 盆栽基质 | 第38页 |
| 4.2 试验方法 | 第38-40页 |
| 4.2.1 发芽率测定 | 第38-39页 |
| 4.2.2 根系生长测定 | 第39-40页 |
| 4.2.3 幼苗生长状态测定 | 第40页 |
| 4.2.4 统计方法 | 第40页 |
| 4.3 结果与分析 | 第40-45页 |
| 4.3.1 盐胁迫下转基因拟南芥种子萌发情况 | 第40-42页 |
| 4.3.2 盐胁迫下转基因拟南芥根系生长情况 | 第42-43页 |
| 4.3.3 盐胁迫下转基因拟南芥的表型及生理指标变化 | 第43-45页 |
| 4.4 讨论 | 第45-47页 |
| 第五章 结论 | 第47-49页 |
| 5.1 小麦成熟胚再生体系的优化 | 第47页 |
| 5.2 农杆菌介导CL5527基因的遗传转化 | 第47页 |
| 5.3 盐生草耐盐基因的功能验证 | 第47-48页 |
| 5.4 研究展望 | 第48-49页 |
| 参考文献 | 第49-56页 |
| 致谢 | 第56-57页 |
| 作者简介 | 第57-58页 |
| 导师简介 | 第58-59页 |