摘要 | 第5-7页 |
Abstract | 第7-8页 |
0 前言 | 第11-12页 |
1 文献综述 | 第12-26页 |
1.1 环境内分泌干扰物与壬基酚 | 第12-15页 |
1.1.1 环境内分泌干扰物的概念 | 第12-13页 |
1.1.2 环境内分泌干扰物的危害 | 第13页 |
1.1.3 壬基酚的来源及危害 | 第13-15页 |
1.2 壬基酚的污染现状 | 第15-17页 |
1.2.1 我国水环境现状 | 第15-16页 |
1.2.2 胶州湾污染现状 | 第16-17页 |
1.3 壬基酚在环境中的分布和迁移转化 | 第17-18页 |
1.4 壬基酚的微生物降解 | 第18-25页 |
1.4.1 降解壬基酚的微生物及其降解特性 | 第19页 |
1.4.2 壬基酚生物降解的影响因素 | 第19-20页 |
1.4.3 壬基酚降解途径及其降解产物 | 第20-25页 |
1.5 课题研究的目的、意义及内容 | 第25-26页 |
2 壬基酚降解真菌的分离、纯化和鉴定 | 第26-33页 |
2.1 实验材料与仪器 | 第26-28页 |
2.1.1 实验原料及试剂 | 第26-27页 |
2.1.2 实验仪器 | 第27页 |
2.1.3 培养基的配制 | 第27-28页 |
2.1.4 河口底泥样品的采集 | 第28页 |
2.2 目标菌株的分离、纯化和保存 | 第28-29页 |
2.2.1 目标菌株的分离、纯化 | 第28页 |
2.2.2 目标株的保存 | 第28-29页 |
2.3 壬基酚降解真菌的纯培养特征及微观形态观察 | 第29-31页 |
2.4 目标真菌的分子生物学鉴定 | 第31-32页 |
2.5 小结 | 第32-33页 |
3 壬基酚降解真菌对壬基酚的降解特性 | 第33-46页 |
3.1 壬基酚降解真菌的生长曲线及降解曲线 | 第33-39页 |
3.1.1 实验材料与仪器 | 第33-34页 |
3.1.1.1 实验原料及试剂 | 第33页 |
3.1.1.2 实验仪器 | 第33-34页 |
3.1.2 样品前处理 | 第34-35页 |
3.1.3 仪器分析 | 第35-36页 |
3.1.4 降解率和去除率的计算 | 第36-37页 |
3.1.5 结果分析与讨论 | 第37-39页 |
3.1.5.1 壬基酚降解真菌的生长曲线 | 第37-38页 |
3.1.5.2 壬基酚降解真菌对壬基酚的去除和降解曲线 | 第38-39页 |
3.2 壬基酚去除/降解影响因素的研究 | 第39-45页 |
3.2.1 实验方法 | 第39-40页 |
3.2.1.1 不同培养基对壬基酚的降解实验 | 第39页 |
3.2.1.2 不同盐度对壬基酚的降解实验 | 第39页 |
3.2.1.3 不同培养方式对壬基酚的降解实验 | 第39页 |
3.2.1.4 不同壬基酚初始浓度对其的降解实验 | 第39-40页 |
3.2.2 结果与讨论 | 第40-45页 |
3.2.2.1 培养基对壬基酚降解的影响 | 第40-41页 |
3.2.2.2 盐度对壬基酚降解的影响 | 第41-42页 |
3.2.2.3 培养方式对壬基酚降解的影响 | 第42-43页 |
3.2.2.4 壬基酚初始浓度对其降解的影响 | 第43-45页 |
3.3 本章小结 | 第45-46页 |
4 Penicillium simplicissimum strain PS1(NPF-4)对壬基酚的降解特性研究 | 第46-51页 |
4.1 实验方法 | 第46-47页 |
4.1.1 不同壬基酚初始浓度对其的降解实验 | 第46页 |
4.1.2 不同葡萄糖的含量对壬基酚的降解实验 | 第46页 |
4.1.3 混合菌对壬基酚的降解实验 | 第46-47页 |
4.2 结果与讨论 | 第47-50页 |
4.2.1 壬基酚初始浓度对其降解的影响 | 第47-48页 |
4.2.2 葡萄糖的含量对壬基酚降解的影响 | 第48-49页 |
4.2.3 混合菌对壬基酚降解的影响 | 第49-50页 |
4.3 本章小结 | 第50-51页 |
5 壬基酚降解产物分析及机理初探 | 第51-55页 |
5.1 样品预处理及检测 | 第51页 |
5.2 壬基酚降解产物分析及降解机理 | 第51-55页 |
6 结论与展望 | 第55-57页 |
6.1 实验结论 | 第55-56页 |
6.2 研究现状与展望 | 第56-57页 |
参考文献 | 第57-63页 |
致谢 | 第63-64页 |
个人简历 | 第64页 |
发表的学术论文 | 第64页 |