| 摘要 | 第3-4页 |
| Abstract | 第4-5页 |
| 主要符号对照表 | 第8-9页 |
| 第1章 引言 | 第9-24页 |
| 1.1 生物矿化概述 | 第9-10页 |
| 1.2 软体动物贝壳结构及生物矿化研究现状 | 第10-17页 |
| 1.2.1 软体动物贝壳的结构及矿化过程 | 第10-11页 |
| 1.2.2 贝壳珍珠层形成的分子机理 | 第11-14页 |
| 1.2.3 贝壳基质蛋白 | 第14-15页 |
| 1.2.4 细胞培养研究现状 | 第15-17页 |
| 1.3 iPSCs 研究现状 | 第17-22页 |
| 1.3.1 iPSCs 介绍 | 第17-18页 |
| 1.3.2 iPSCs 相关的转录因子 | 第18-22页 |
| 1.3.3 太平洋牡蛎中类似研究 | 第22页 |
| 1.4 研究目的与意义 | 第22-23页 |
| 1.5 论文个部分主要内容 | 第23-24页 |
| 第2章 c-Myc、Sox2 及 KLF4 基因的克隆及分析 | 第24-40页 |
| 2.1 实验材料和方法 | 第24-30页 |
| 2.1.1 实验材料 | 第24页 |
| 2.1.2 引物设计 | 第24-25页 |
| 2.1.3 总 RNA 提取 | 第25页 |
| 2.1.4 RACE PCR 克隆基因 | 第25-28页 |
| 2.1.6 PCR 产物回收 | 第28-29页 |
| 2.1.7 E.coli 感受态细胞转化 | 第29页 |
| 2.1.8 测序 | 第29-30页 |
| 2.1.9 基因的序列分析 | 第30页 |
| 2.2 实验结果及分析 | 第30-38页 |
| 2.2.1 c-Myc、Sox2 及 KLF4 基因的克隆及其序列分析 | 第30-33页 |
| 2.2.2 c-Myc、Sox2 及 KLF4 基因编码蛋白生物信息学分析 | 第33-34页 |
| 2.2.3 c-Myc、Sox2 及 KLF4 基因编码蛋白同源性分析 | 第34-38页 |
| 2.3 讨论与小结 | 第38-40页 |
| 第3章 c-Myc、Sox2 及 KLF4 在合浦珠母贝组织中的分布 | 第40-49页 |
| 3.1 实验材料与方法 | 第40-44页 |
| 3.1.1 实验材料 | 第40页 |
| 3.1.2 合浦珠母贝各组织 RNA 提取 | 第40页 |
| 3.1.3 引物设计 | 第40-41页 |
| 3.1.4 RNA 反转录合成 cDNA 模板 | 第41-42页 |
| 3.1.5 RT-PCR 检测组织分布 | 第42-43页 |
| 3.1.6 Real-Time PCR 检测组织表达差异 | 第43-44页 |
| 3.2 实验结果 | 第44-46页 |
| 3.2.1 合浦珠母贝各组织分布 | 第44-45页 |
| 3.2.2 外套膜中心和边缘的表达差异 | 第45-46页 |
| 3.3 讨论与小结 | 第46-49页 |
| 第4章 结论 | 第49-50页 |
| 参考文献 | 第50-54页 |
| 致谢 | 第54-56页 |
| 个人简历、在学期间发表的学术论文与研究成果 | 第56页 |
