| 摘要 | 第7-8页 |
| ABSTRACT | 第8页 |
| 上篇 文献综述 | 第9-26页 |
| 第一章 番茄斑萎病毒研究进展概况 | 第10-18页 |
| 1.1 番茄斑萎病毒的分类及地位 | 第10页 |
| 1.2 病毒特性 | 第10-11页 |
| 1.3 生物学特性研究 | 第11-12页 |
| 1.4 基因组学研究 | 第12-13页 |
| 1.5 番茄斑萎病毒的防治与检测 | 第13-14页 |
| 1.6 植物病毒的胞间移动 | 第14-15页 |
| 1.7 植物病毒的胞内移动 | 第15-16页 |
| 1.8 TSWV的移动蛋白NSm | 第16-18页 |
| 第二章 植物原生质体研究概况 | 第18-22页 |
| 2.1 原生质体概述 | 第18页 |
| 2.2 原生质体分离来源及方法 | 第18-19页 |
| 2.3 影响原生质体分离的因素 | 第19页 |
| 2.4 外源基因在原生质体中的瞬时表达 | 第19-22页 |
| 第三章 免疫荧光技术和激光共聚焦技术研究进展 | 第22-26页 |
| 3.1 免疫荧光技术概述 | 第22页 |
| 3.2 免疫荧光技术的分类 | 第22-23页 |
| 3.3 免疫荧光常用荧光素 | 第23-24页 |
| 3.4 免疫荧光技术应用 | 第24页 |
| 3.5 激光共聚焦技术概述 | 第24-25页 |
| 3.6 激光共聚焦技术的应用 | 第25-26页 |
| 下篇 研究内容 | 第26-62页 |
| 第四章 内质网对于TSWV及其移动蛋白NSm的移动具有重要作用 | 第28-52页 |
| 4.1 实验材料 | 第28-29页 |
| 4.1.1 植物材料 | 第28页 |
| 4.1.2 毒源 | 第28页 |
| 4.1.3 质粒及表达载体 | 第28页 |
| 4.1.4 常规化学试剂 | 第28-29页 |
| 4.1.5 实验用常规仪器 | 第29页 |
| 4.2 实验方法 | 第29-44页 |
| 4.2.1 载体构建 | 第29-35页 |
| 4.2.2 TSWV病毒颗粒的抽提 | 第35-36页 |
| 4.2.3 农杆菌介导表达载体在植物体内的表达 | 第36-38页 |
| 4.2.4 拟南芥原生质体分离及转染体系的建立 | 第38-39页 |
| 4.2.5 基因枪技术鉴定NSm的移动是否受内质网影响 | 第39-40页 |
| 4.2.6 病毒颗粒转染原生质体后总蛋白和RNA表达量的分析 | 第40-44页 |
| 4.3 结果与分析 | 第44-50页 |
| 4.3.1 内质网结构对于TSWV侵染具有重要作用 | 第44-46页 |
| 4.3.2 内质网结构对于TSWV移动蛋白NSm的胞间移动具有重要作用 | 第46-48页 |
| 4.3.3 TSWV在rhd3突变体原生质体中的复制量没有明显变化 | 第48-50页 |
| 4.4 结果与讨论 | 第50-52页 |
| 第五章 内质网与TSWV NSm诱导管状结构形成的关系 | 第52-62页 |
| 5.1 材料 | 第52-53页 |
| 5.1.1 植物材料 | 第52页 |
| 5.1.2 毒源 | 第52页 |
| 5.1.3 质粒及表达载体 | 第52页 |
| 5.1.4 常规化学试剂 | 第52-53页 |
| 5.1.5 实验用常规仪器 | 第53页 |
| 5.2 方法 | 第53-57页 |
| 5.2.1 载体构建 | 第53-54页 |
| 5.2.2 免疫荧光技术探究蛋白质亚细胞定位 | 第54-56页 |
| 5.2.3 本氏烟转基因技术 | 第56-57页 |
| 5.3 结果与分析 | 第57-62页 |
| 5.3.1 载体构建结果 | 第57页 |
| 5.3.2 探究病毒蛋白的亚细胞定位 | 第57-58页 |
| 5.3.3 内质网可能参与NSm诱导管状结构的过程 | 第58-59页 |
| 5.3.4 p2300-NSm-YFP和pRTL2-TEV-NSm转基因本氏烟 | 第59-61页 |
| 5.3.5 结论与讨论 | 第61-62页 |
| 参考文献 | 第62-68页 |
| 附录 | 第68-76页 |
| 攻读硕士学位期间发表的论文 | 第76-78页 |
| 致谢 | 第78页 |
