| 摘要 | 第10-11页 |
| Abstract | 第11-12页 |
| 第一章 文献综述 | 第13-23页 |
| 1.1 草莓休眠习性 | 第13-14页 |
| 1.1.1 休眠期的形态及生理变化 | 第13页 |
| 1.1.2 草莓休眠的特点 | 第13-14页 |
| 1.2 影响草莓休眠的因素 | 第14-16页 |
| 1.2.1 外部环境因素对草莓休眠的影响 | 第14-15页 |
| 1.2.2 赤霉素对草莓休眠的影响 | 第15-16页 |
| 1.3 植物休眠机理研究进展 | 第16-20页 |
| 1.3.1 种子休眠的研究进展 | 第16-18页 |
| 1.3.2 芽休眠的研究进展 | 第18-20页 |
| 1.4 SVP类基因的研究进展 | 第20-22页 |
| 1.4.1 SVP类基因的结构 | 第20-21页 |
| 1.4.2 SVP类基因的表达 | 第21页 |
| 1.4.3 SVP类基因的功能 | 第21-22页 |
| 1.5 本研究的目的和意义 | 第22-23页 |
| 第二章 草莓SVP同源基因克隆 | 第23-33页 |
| 2.1 试验材料 | 第23页 |
| 2.1.1 供试材料 | 第23页 |
| 2.1.2 主要试剂 | 第23页 |
| 2.2 试验方法 | 第23-26页 |
| 2.2.1 草莓总RNA的提取 | 第23-24页 |
| 2.2.2 RNA的质量和纯度检测 | 第24页 |
| 2.2.3 引物的设计 | 第24页 |
| 2.2.4 草莓SVP同源基因片段的分离 | 第24-25页 |
| 2.2.5 目的片段回收与连接及转化 | 第25-26页 |
| 2.2.6 菌落PCR鉴定及测序 | 第26页 |
| 2.2.7 序列分析 | 第26页 |
| 2.3 结果与分析 | 第26-32页 |
| 2.3.1 草莓SVP同源基因cDNA全长的克隆 | 第26-28页 |
| 2.3.2 FaSVPs基因生物信息学分析 | 第28-29页 |
| 2.3.3 FaSVPs编码蛋白组成和结构预测与分析 | 第29-32页 |
| 2.4 讨论 | 第32-33页 |
| 第三章 FaSVPs基因的表达分析 | 第33-44页 |
| 3.1 试验材料 | 第33页 |
| 3.1.1 供试材料 | 第33页 |
| 3.1.2 试验试剂 | 第33页 |
| 3.2 试验方法 | 第33-36页 |
| 3.2.1 赤霉素打破休眠处理方法 | 第33-34页 |
| 3.2.2 基因表达检测 | 第34-36页 |
| 3.3 结果与分析 | 第36-41页 |
| 3.3.1 FaSVPs基因在草莓不同组织器官中的表达 | 第36-37页 |
| 3.3.2 休眠进程中FaSVPs基因的表达变化分析 | 第37-38页 |
| 3.3.3 赤霉素处理对草莓性状及FaSVP1表达的影响 | 第38-41页 |
| 3.4 讨论 | 第41-44页 |
| 3.4.1 FaSVPs表达模式 | 第41-42页 |
| 3.4.2 赤霉素对草莓休眠及目的基因表达的调控作用 | 第42-44页 |
| 第四章 FaSVPs基因植物表达载体构建及其在拟南芥中的超表达 | 第44-56页 |
| 4.1 试验材料 | 第44页 |
| 4.1.1 植物材料 | 第44页 |
| 4.1.2 试验质粒、菌株 | 第44页 |
| 4.1.3 主要试剂 | 第44页 |
| 4.2 试验方法 | 第44-48页 |
| 4.2.1 FaSVPs超表达载体构建 | 第44-46页 |
| 4.2.2 超表达载体的农杆菌转化 | 第46页 |
| 4.2.3 拟南芥遗传转化 | 第46-47页 |
| 4.2.4 转化株筛选鉴定 | 第47-48页 |
| 4.3 结果与分析 | 第48-54页 |
| 4.3.1 FaSVPs-pRI101-AN超表达载体构建 | 第48-49页 |
| 4.3.2 农杆菌转化 | 第49-50页 |
| 4.3.3 FaSVPs基因在拟南芥中的超表达 | 第50-54页 |
| 4.4 讨论 | 第54-56页 |
| 4.4.1 FaSVPs基因超表达植株生长习性的变化 | 第54-55页 |
| 4.4.2 FaSVPs基因超表达对花器结构的影响 | 第55-56页 |
| 结论 | 第56-57页 |
| 参考文献 | 第57-64页 |
| 致谢 | 第64页 |
