| 摘要 | 第4-6页 |
| Abstract | 第6-7页 |
| 第一部分 文献综述 | 第11-16页 |
| 1 国内外研究现状 | 第11-16页 |
| 1.1 记忆 | 第11-14页 |
| 1.1.1 记忆的分子机制 | 第11-12页 |
| 1.1.2 记忆的突触机制 | 第12页 |
| 1.1.3 运动对记忆的影响 | 第12-13页 |
| 1.1.4 额叶与记忆 | 第13-14页 |
| 1.2 OX1R和ORX-A | 第14-15页 |
| 1.2.1 OX1R和ORX-A概述 | 第14页 |
| 1.2.2 ORX-A和OX1R与记忆 | 第14-15页 |
| 1.2.3 ORX-A和OX1R调节记忆的神经机制 | 第15页 |
| 1.3 ORX-A和OX1R与运动 | 第15-16页 |
| 第二部分 实验研究 | 第16-42页 |
| 1 前言 | 第16-17页 |
| 2 材料与方法 | 第17-29页 |
| 2.1 实验对象 | 第17页 |
| 2.2 实验动物分组 | 第17页 |
| 2.3 实验造模 | 第17-18页 |
| 2.3.1 实验方案 | 第17-18页 |
| 2.3.2 Morris水迷宫训练和行为学测试 | 第18页 |
| 2.4 取材和样本的制备 | 第18-19页 |
| 2.5 额叶OX1R的免疫荧光检测 | 第19-20页 |
| 2.5.1 操作步骤 | 第19页 |
| 2.5.2 结果分析 | 第19页 |
| 2.5.3 相关试剂的配制 | 第19-20页 |
| 2.5.4 主要仪器 | 第20页 |
| 2.6 额叶OX1R的Real-time PCR检测 | 第20-23页 |
| 2.6.1 额叶OX1R总RNA提取 | 第20-21页 |
| 2.6.2 额叶OX1R的RNA完整性和纯度检测 | 第21页 |
| 2.6.3 cDNA的合成（反转录） | 第21-22页 |
| 2.6.4 Real-time qPCR反应 | 第22-23页 |
| 2.6.5 结果处理 | 第23页 |
| 2.7 额叶OX1R和ORX-A的Western blotting检测 | 第23-29页 |
| 2.7.1 OX1R和ORX-A总蛋白质的提取与测定 | 第23-24页 |
| 2.7.2 蛋白含量的测定 | 第24页 |
| 2.7.3 SDS－PAGE电泳 | 第24-26页 |
| 2.7.4 主要仪器 | 第26页 |
| 2.7.5 相关溶液的配置 | 第26-29页 |
| 3 实验结果 | 第29-38页 |
| 3.1 体重检测结果 | 第29页 |
| 3.2 血睾酮水平 | 第29-30页 |
| 3.3 Morris水迷宫检测结果 | 第30-31页 |
| 3.4 额叶OX1R免疫荧光 | 第31-34页 |
| 3.4.1 大鼠额叶OX1R免疫荧光染色阳性细胞分布及额叶OX1R蛋白的表达 | 第31-32页 |
| 3.4.2 大鼠额叶ORX-A免疫荧光染色阳性细胞分布及各组额叶皮层ORX-A蛋白的表达 | 第32-34页 |
| 3.5 额叶OX1R的Real—time PCR检测 | 第34-36页 |
| 3.5.1 琼脂糖凝胶电泳 | 第34页 |
| 3.5.2 标准曲线的建立 | 第34-35页 |
| 3.5.3 额叶OX1R及β-actin扩增曲线及溶解曲线 | 第35页 |
| 3.5.4 大鼠额叶OX1R及ORX-A基因 | 第35-36页 |
| 3.6 大鼠额叶OX1R Western blot检测结果 | 第36-37页 |
| 3.6.1 大鼠额叶OX1R Western blot检测结果 | 第37页 |
| 3.7 大鼠额叶各检测指标与Morris水迷宫穿越站台次数的相关性统计分析 | 第37-38页 |
| 4 分析与讨论 | 第38-41页 |
| 4.1 大鼠造模验证 | 第38页 |
| 4.2 不同负荷运动对大鼠体重的影响 | 第38-39页 |
| 4.3 不同负荷运动对大鼠空间记忆提取的影响 | 第39-40页 |
| 4.4 不同负荷运动对大鼠额叶ORX-A、OX1R表达的影响 | 第40-41页 |
| 4.5 大鼠额叶各检测指标与Morris水迷宫穿越站台次数的相关性探讨 | 第41页 |
| 5 结论 | 第41-42页 |
| 参考文献 | 第42-47页 |
| 附录 | 第47-48页 |
| 致谢 | 第48页 |
