| 英文缩略名称一览表 | 第8-10页 |
| 中文摘要 | 第10-12页 |
| Abstract | 第12-14页 |
| 1. 绪论 | 第15-20页 |
| 1.1 椎管内吗啡引起皮肤瘙痒的临床现状 | 第15页 |
| 1.2 椎管内吗啡镇痛和皮肤瘙痒发生的相关机制 | 第15-17页 |
| 1.2.1 阿片受体及椎管内吗啡的镇痛作用 | 第15-16页 |
| 1.2.2 椎管内吗啡引起皮肤瘙痒的相关机制 | 第16-17页 |
| 1.3 ERK与瘙痒、疼痛发生过程中可能的内在联系 | 第17-18页 |
| 1.4 研究假设 | 第18-20页 |
| 2. 技术路线 | 第20-21页 |
| 3. 材料和方法 | 第21-34页 |
| 3.1 小鼠椎管内吗啡皮肤瘙痒模型 | 第21-24页 |
| 3.1.1 实验动物和材料 | 第21-22页 |
| 3.1.2 小鼠椎管内吗啡瘙痒模型建立 | 第22-23页 |
| 3.1.3 镇痛行为学评估 | 第23-24页 |
| 3.2 动物处死及标本获取 | 第24页 |
| 3.3 Western blot测定ERK磷酸化表达水平的变化 | 第24-31页 |
| 3.3.1 实验材料 | 第24-26页 |
| 3.3.2 蛋白样品制备 | 第26-27页 |
| 3.3.3 BCA法测定蛋白含量 | 第27页 |
| 3.3.4 SDS聚丙烯酰胺凝胶电泳 | 第27-29页 |
| 3.3.5 转膜 | 第29页 |
| 3.3.6 封闭 | 第29-30页 |
| 3.3.7 免疫反应 | 第30页 |
| 3.3.8 化学发光 | 第30-31页 |
| 3.3.9 图像分析 | 第31页 |
| 3.4 荧光免疫组化测定ERK磷酸化表达的部位 | 第31-33页 |
| 3.4.1 实验材料 | 第31-32页 |
| 3.4.2 取材与组织切片制备 | 第32页 |
| 3.4.3 荧光免疫组化 | 第32-33页 |
| 3.4.4 图像分析 | 第33页 |
| 3.5 统计学方法 | 第33-34页 |
| 4. 结果 | 第34-54页 |
| 4.1 小鼠椎管内吗啡瘙痒模型的建立以及行为学监测 | 第34-40页 |
| 4.1.1 椎管内吗啡小鼠瘙痒行为学监测 | 第34-37页 |
| 4.1.2 小鼠椎管内吗啡瘙痒模型镇痛行为学监测 | 第37-40页 |
| 4.2 椎管内鞘注吗啡可引起小鼠腰段脊髓背角pERK1/2表达水平的升高 | 第40-43页 |
| 4.2.1 利用BCA法测定蛋白浓度 | 第40-41页 |
| 4.2.2 鞘内注射0.5ug吗啡可引起小鼠腰段脊髓背角pERK1/2水平升高 | 第41-43页 |
| 4.3 小鼠椎管内吗啡皮肤瘙痒模型pERK表达的部位 | 第43-44页 |
| 4.3.1 脊髓背角的pERK和GFAP双染 | 第43页 |
| 4.3.2 脊髓背角的pERK和NeuN双染 | 第43-44页 |
| 4.4 ERK磷酸化抑制剂U0126能缓解椎管内吗啡所致皮肤瘙痒 | 第44-47页 |
| 4.5 ERK磷酸化抑制剂U0126不影响小鼠椎管内吗啡的镇痛作用 | 第47-51页 |
| 4.6 验证U0126对椎管内吗啡小鼠腰段脊髓背角pERK1/2表达水平的影响 | 第51-54页 |
| 4.6.1 利用BCA法测定蛋白浓度 | 第51-52页 |
| 4.6.2 U0126可降低椎管内吗啡小鼠腰段脊髓背角pERK1/2的表达水平 | 第52-54页 |
| 5. 讨论 | 第54-64页 |
| 5.1 小鼠椎管内吗啡瘙痒模型及行为学监测的可行性 | 第54-55页 |
| 5.1.1 清醒小鼠鞘内注射方法及改进 | 第54页 |
| 5.1.2 小鼠椎管内吗啡瘙痒模型的评估 | 第54-55页 |
| 5.1.3 小鼠椎管内吗啡瘙痒和镇痛行为学比较 | 第55页 |
| 5.2 椎管内吗啡引起小鼠pERK1/2表达水平的变化及其分布规律 | 第55-57页 |
| 5.3 ERK磷酸化抑制剂对椎管内吗啡所致皮肤瘙痒的影响 | 第57-59页 |
| 5.4 ERK磷酸化抑制剂对椎管内吗啡镇痛效果的影响 | 第59-61页 |
| 5.5 ERK磷酸化与椎管内吗啡镇痛及瘙痒信号通路的关系 | 第61-62页 |
| 5.6 小结 | 第62-63页 |
| 5.7 不足与展望 | 第63-64页 |
| 6. 结论 | 第64-65页 |
| 参考文献 | 第65-69页 |
| 综述 | 第69-84页 |
| 参考文献 | 第80-84页 |
| 发表文章 | 第84页 |
| 参加学术会议 | 第84-85页 |
| 致谢 | 第85-87页 |
