| 摘要 | 第4-7页 |
| ABSTRACT | 第7-9页 |
| 缩略词(Abbreviation) | 第12-14页 |
| 第一章 文献综述 | 第14-26页 |
| 1 miRNAs研究进展 | 第14-21页 |
| 1.1 miRNAs概述 | 第14页 |
| 1.2 miRNAs的合成过程 | 第14-15页 |
| 1.3 miRNAs调控机制研究 | 第15-16页 |
| 1.4 miRNAs的检测方法 | 第16-17页 |
| 1.5 miRNAs在猪方面的研究进展 | 第17-18页 |
| 1.6 miRNAs与糖尿病 | 第18-21页 |
| 2 Caveolin-1研究概况 | 第21-23页 |
| 2.1 Caveolin-1基因结构 | 第21页 |
| 2.2 Caveolin-1生物学功能 | 第21-23页 |
| 3 广西巴马小型猪Ⅱ型糖尿病模型的优势 | 第23-25页 |
| 3.1 动物模型构建方式 | 第23页 |
| 3.2 小型猪作为动物模型的优势 | 第23-24页 |
| 3.3 广西巴马小型猪T2DM模型简介 | 第24-25页 |
| 4 实验目的及意义 | 第25-26页 |
| 第二章 巴马小型猪T2DM模型miRNAs表达差异 | 第26-46页 |
| 1 材料与方法 | 第26-33页 |
| 1.1 试验材料 | 第26-27页 |
| 1.2 试验方法 | 第27-33页 |
| 2 结果 | 第33-42页 |
| 2.1 巴马小型猪T2DM模型总RNA的提取 | 第33-34页 |
| 2.2 巴马小型猪miR-103、107、122、143-5p基因克隆 | 第34-36页 |
| 2.3 实时荧光定量PCR测定巴马小型猪组织miRNAs表达谱 | 第36-40页 |
| 2.4 巴马小型猪T2DM模型miRNAs表达差异 | 第40-42页 |
| 3 讨论 | 第42-45页 |
| 3.1 miRNAs引物设计原则及扩增原理 | 第42-43页 |
| 3.2 巴马小型猪miRNAs基因成熟序列分析 | 第43页 |
| 3.3 巴马小型猪miRNAs组织表达谱分析 | 第43-44页 |
| 3.4 巴马小型猪T2DM模型miRNAs表达差异分析 | 第44-45页 |
| 4 小结 | 第45-46页 |
| 第三章 巴马小型猪miR-103/107体外调控机制研究 | 第46-72页 |
| 第一节 巴马小型猪miR-103/107靶基因的预测 | 第46-53页 |
| 1 材料与方法 | 第46-48页 |
| 1.1 试验材料 | 第46页 |
| 1.2 试验方法 | 第46-48页 |
| 2 试验结果 | 第48-52页 |
| 2.1 猪miR-103/107靶基因预测 | 第48-50页 |
| 2.2 巴马小型猪Caveolin-1基因3'UTR克隆及序列分析 | 第50-52页 |
| 3 讨论 | 第52-53页 |
| 第二节 巴马小型猪miR-103/107在C2C12细胞内调控机制研究 | 第53-72页 |
| 1 材料与方法 | 第53-62页 |
| 1.1 试验材料 | 第53页 |
| 1.2 试验方法 | 第53-62页 |
| 2 结果 | 第62-70页 |
| 2.1 巴马小型猪pre-103/107克隆 | 第62-66页 |
| 2.2 真核表达载体转染C2C12细胞荧光情况 | 第66页 |
| 2.3 C2C12细胞miR-103/107及Caveolin-1表达情况 | 第66-70页 |
| 3 讨论 | 第70-71页 |
| 4 小结 | 第71-72页 |
| 第四章 巴马小型猪T2DM模型Caveolin-1表达差异 | 第72-84页 |
| 1 材料与方法 | 第72-76页 |
| 1.1 试验材料 | 第72-73页 |
| 1.2 试验方法 | 第73-76页 |
| 2 结果 | 第76-81页 |
| 2.1 巴马小型猪Caveolin-1部分目的片段克隆 | 第76-77页 |
| 2.2 猪Caveolin-1标准曲线的建立 | 第77-78页 |
| 2.3 巴马小型猪T2DM模型Caveolin-1组织表达差异分析 | 第78-79页 |
| 2.4 巴马小型猪T2DM模型Caveolin-1多态性分析 | 第79-81页 |
| 3 讨论 | 第81-83页 |
| 4 小结 | 第83-84页 |
| 结论 | 第84-85页 |
| 参考文献 | 第85-91页 |
| 附录 | 第91-93页 |
| 致谢 | 第93-94页 |
| 攻读硕士学位期间发表论文情况 | 第94页 |
