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猪血清中PPV的分离与鉴定及培养条件的优化

摘要第4-5页
Abstract第5页
第一章 猪细小病毒研究进展第9-21页
    1 PPV的分类地位第9-10页
    2 PPV病毒分离第10-13页
    3 PPV的细胞嗜性及体外培养第13-15页
    4 病毒理化特性第15页
    5 PPV基因组结构第15-16页
    6 流行病学第16-19页
    7 PPV疫苗的研究情况第19-20页
    8 小结与展望第20-21页
第二章 猪血清中猪细小病毒的检测及病毒分离第21-33页
    1 材料与方法第21-26页
        1.1 病料、分离细胞及实验动物第21页
        1.2 主要仪器第21页
        1.3 主要试剂第21-22页
        1.4 血清中DNA的提取第22页
        1.5 引物设计第22-24页
        1.6 病原检测第24页
        1.7 病毒分离第24-25页
        1.8 豚鼠红细胞的制备第25页
        1.9 病毒血凝效价的测定第25页
        1.10 病毒液中DNA的提取第25-26页
        1.11 病毒液DNA PCR检测第26页
        1.12 序列测定及同源性分析第26页
    2 结果第26-30页
        2.1 猪细小病毒病原检测结果第26-27页
        2.2 病毒分离结果第27-28页
        2.3 血凝效价结果第28页
        2.4 病毒液DNA PCR检测结果第28页
        2.5 测序引物扩增分离株PCR结果第28-29页
        2.6 PPV分离株16WS序列测定第29页
        2.7 PPV分离株16WS核苷酸序列分析第29-30页
        2.8 PPV分离株16WS进化分析第30页
    3 分析与讨论第30-32页
    4 小结第32-33页
第三章 SYBR Green实时荧光定量PCR检测PPV方法的建立第33-39页
    1 材料与方法第33-34页
        1.1 感受态细胞第33页
        1.2 主要试剂第33页
        1.3 荧光定量PCR引物设计与合成第33页
        1.4 病毒DNA的提取及PCR扩增第33-34页
        1.5 感受态(JM109)细胞的制备第34页
        1.6 PMD-T-NS1重组质粒的构建第34页
        1.7 猪细小病毒SYBR Green实时荧光定量PCR方法的建立第34页
    2 结果第34-37页
        2.1 PPV分离株16WS PCR扩增结果第34-35页
        2.2 阳性鉴定结果第35页
        2.3 检测PPV实时荧光定量标准曲线的建立第35-36页
        2.4 直线回归方程的建立第36-37页
    3 讨论与分析第37-38页
    4 小结第38-39页
第四章 PPV-16WS株最适培养条件的优化第39-51页
    1 材料与方法第39-42页
        1.1 细胞、毒株第39页
        1.2 主要仪器第39页
        1.3 主要试剂第39页
        1.4 ST细胞生长速度的测定第39-40页
        1.5 病毒孵育时间对病毒滴度的影响第40页
        1.6 细胞密度对病毒滴度的影响第40页
        1.7 接种量对病毒滴度的影响第40-41页
        1.8 收毒时间对病毒滴度的影响第41页
        1.9 比较六孔板培养体积对病毒滴度的影响第41页
        1.10 探究二氧化碳对病毒培养的影响第41-42页
    2 结果第42-48页
        2.1 ST细胞增殖速度的测定第42页
        2.2 病毒孵育时间对病毒滴度的影响第42-43页
        2.3 细胞密度对病毒滴度的影响第43-44页
        2.4 接种量对病毒滴度的影响第44-45页
        2.5 病毒收毒时间对病毒滴度的影响第45-46页
        2.6 六孔板培养体积对病毒滴度的影响第46-47页
        2.7 二氧化碳对病毒滴度的影响第47-48页
    3 讨论与分析第48-49页
    4 小结第49-51页
参考文献第51-56页
附录第56-57页
缩略词表第57-58页
致谢第58-59页
作者简介第59页

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