| 摘要 | 第7-9页 |
| Abstract | 第9-10页 |
| 缩略词表 | 第11-12页 |
| 第一章 文献综述、研究目的和意义 | 第12-26页 |
| 1.1 引言 | 第12页 |
| 1.2 微生物分类和鉴定 | 第12-14页 |
| 1.3 Sphingomonadaceae科的简介 | 第14-15页 |
| 1.4 Sphingomonas属的简介及应用 | 第15-17页 |
| 1.4.1 Sphingomonas属的简介 | 第15页 |
| 1.4.2 Sphingomonas属的应用 | 第15-17页 |
| 1.5 锑的简介 | 第17-18页 |
| 1.5.1 锑的理化性质和环境分布 | 第17页 |
| 1.5.2 锑的应用及危害 | 第17-18页 |
| 1.6 微生物的锑代谢机制 | 第18-21页 |
| 1.6.1 微生物对锑的吸收与外排 | 第18-19页 |
| 1.6.2 微生物对锑的甲基化 | 第19-20页 |
| 1.6.3 微生物对锑的氧化和还原 | 第20-21页 |
| 1.7 甲酸脱氢酶 | 第21-23页 |
| 1.7.1 甲酸脱氢酶的分类及功能 | 第21-22页 |
| 1.7.2 FdhO的结构及功能 | 第22-23页 |
| 1.8 本课题的目的、意义及技术路线 | 第23-26页 |
| 1.8.1 本课题的目的、意义 | 第23-24页 |
| 1.8.2 技术路线 | 第24-26页 |
| 第二章 鞘氨醇单胞菌属新种鉴定 | 第26-56页 |
| 2.1 前言 | 第26页 |
| 2.2 实验材料 | 第26-27页 |
| 2.2.1 实验样品 | 第26页 |
| 2.2.2 培养基 | 第26-27页 |
| 2.2.3 参考模式菌株 | 第27页 |
| 2.3 实验方法 | 第27-41页 |
| 2.3.1 基因型特征 | 第27-29页 |
| 2.3.2 表型特征 | 第29-41页 |
| 2.4 结果与分析 | 第41-56页 |
| 2.4.1 基因型特征 | 第41-44页 |
| 2.4.2 表型特征 | 第44-49页 |
| 2.4.3 化学分类特征 | 第49-52页 |
| 2.4.4 菌种描述 | 第52-53页 |
| 2.4.5 讨论 | 第53-55页 |
| 2.4.6 本研究的创新性与展望 | 第55-56页 |
| 第三章 丛毛单胞菌JL40中甲酸脱氢酶对锑抗性及氧化的作用 | 第56-73页 |
| 3.1 引言 | 第56页 |
| 3.2 实验材料 | 第56-60页 |
| 3.2.1 实验样品 | 第56页 |
| 3.2.2 培养基及组分 | 第56-57页 |
| 3.2.3 试剂 | 第57-58页 |
| 3.2.4 菌株及质粒 | 第58-60页 |
| 3.2.5 引物及序列 | 第60页 |
| 3.3 实验方法 | 第60-65页 |
| 3.3.1 基因的敲除与互补 | 第60-63页 |
| 3.3.2 锑抗性MIC的测定 | 第63页 |
| 3.3.3 生长和氧化实验 | 第63页 |
| 3.3.4 静息细胞法测定fdhO在大肠杆菌S17-1中的Sb(Ⅲ)氧化 | 第63页 |
| 3.3.5 报告基因融合实验 | 第63-64页 |
| 3.3.6 胞内谷胱甘肽(GSH)和过氧化氢(H_2O_2)含量检测 | 第64-65页 |
| 3.4 结果与分析 | 第65-71页 |
| 3.4.1 Comamonas sp.JL40fdhO基因的敲除与互补 | 第65-66页 |
| 3.4.2 锑抗性MIC的测定 | 第66-67页 |
| 3.4.3 Comamonas sp. JL40及其突变株、互补株的生长和氧化实验 | 第67-68页 |
| 3.4.4 静息细胞法测定fdhO在大肠杆菌S17-1中的Sb(Ⅲ)氧化 | 第68-69页 |
| 3.4.5 Sb(Ⅲ)对fdh0基因的诱导表达 | 第69页 |
| 3.4.6 胞内谷胱甘肽(GSH)和过氧化氢(H202)含量检测 | 第69-71页 |
| 3.5 讨论 | 第71页 |
| 3.6 课题的创新性与展望 | 第71-73页 |
| 参考文献 | 第73-85页 |
| 附录 | 第85-87页 |
| 己发表论文 | 第87页 |
| 获得奖项 | 第87-88页 |
| 致谢 | 第88页 |
