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角质相关基因对CK信号和光信号通路的影响

中文摘要第3-5页
Abstract第5页
缩写词第6-10页
第一章 文献综述第10-31页
    1.1. 细胞分裂素第10-23页
        1.1.1. CK的结构和分类第10-11页
        1.1.2. CK的合成第11-14页
        1.1.3. CK的合成部位和作用部位第14页
        1.1.4. CK的代谢和修饰第14-16页
        1.1.5. CK的转运第16-17页
        1.1.6. CK的信号转导通路第17-22页
        1.1.7. CK与其他激素的相互作用第22页
        1.1.8. CK在植物发育中的作用第22-23页
    1.2. 角质的相关研究进展第23-30页
        1.2.1. 角质的结构第23-24页
        1.2.2. 角质的合成途径第24-27页
        1.2.3. 角质的运输第27-28页
        1.2.4. 角质与其他组分的相互作用第28页
        1.2.5. 角质在植物中的功能第28-30页
    本论文研究的目的和意义第30-31页
第二章 实验材料与方法第31-39页
    2.1. 实验材料第31-32页
        2.1.1. 植物材料第31页
        2.1.2. 实验仪器第31页
        2.1.3. 细菌菌株第31页
        2.1.4. 载体第31页
        2.1.5. 引物合成与基因测序第31页
        2.1.6. 实验药品第31-32页
        2.1.7. 实验试剂配方第32页
    2.2. 实验方法第32-39页
        2.2.1. 拟南芥培养第32页
        2.2.2. CTAB法提取DNA第32-33页
        2.2.3. RNA提取(RNAiso Plus提取法)第33页
        2.2.4. UNIQ柱式Trizol总RNA提取第33-34页
        2.2.5. 质粒提取试剂盒第34页
        2.2.6. 胶回收试剂盒第34-35页
        2.2.7. 长片段的反转录c DNA第一条链的合成第35-36页
        2.2.8. 用于SYBR? Green反应的反转录第36页
        2.2.9. Real-Time PCR第36-37页
        2.2.10. 载体的构建和验证第37-38页
        2.2.11. 甲苯胺蓝染色第38-39页
第三章 实验结果第39-55页
    3.1. 突变体的表型分析第39-46页
        3.1.1. 角质突变体的纯杂合鉴定第39-40页
        3.1.2. 角质突变体和野生型的表型差异第40-42页
        3.1.3. 角质突变体的角质缺陷分析第42-44页
        3.1.4. 暗培养下突变体的表型分析第44-46页
    3.2. CK信号通路的基因表达分析第46-50页
        3.2.1. CK信号通路基因表达的本底水平分析第46-48页
        3.2.2. CK诱导下的基因表达分析第48-50页
    3.3. 光形态建成和暗形态建成的基因表达分析第50-52页
        3.3.1. 光形态发生的基因表达分析第50-51页
        3.3.2. 暗形态发生的基因表达分析第51-52页
    3.4. 超表达载体的构建第52-53页
    3.5. 构建双突gfc1-1/cyp86a8,gfc1-1/cyp86a2,cyp86a2/8第53-54页
    3.6. 筛选双突的gpat6/8 和cyp86a4/6 的纯合体第54-55页
第四章 实验讨论与展望第55-60页
    4.1.实验讨论第55-57页
        4.1.1. 角质突变体gfc1-1、gpat4/8、bdg-1 的type-AARRs本底表达水平比WT高第55页
        4.1.2. 角质突变体gfc1-1、gpat4/8、bdg-1光信号通路的 HY5 异常表达第55-56页
        4.1.3. 角质突变体的暗形态的正调控基因 PIFs 表达下调第56页
        4.1.4. 导致突变体gfc1-1 表型的机制第56-57页
    4.2 实验展望第57-60页
第五章 参考文献第60-69页
在学期间的研究成果第69-70页
附录一 PCR反应所用到的引物第70-72页
附录二 测序结果第72-78页
附录三 载体部分序列第78-79页
致谢第79页

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