| 提要 | 第4-5页 |
| 中文摘要 | 第5-8页 |
| Abstract | 第8-10页 |
| 英文缩写单词表 | 第16-18页 |
| 第一章 文献综述 | 第18-40页 |
| 第1部分 相关蛋白对周围神经损伤后神经修复与再生的促进及抑制作用的研究进展 | 第18-30页 |
| 1. 生长相关蛋白GAP-43与周围神经损伤后修复与再生的关系 | 第18-25页 |
| 1.1 GAP-43的结构和生化特征 | 第18-19页 |
| 1.2 GAP-43的作用机制 | 第19-20页 |
| 1.3 GAP-43的分布和表达 | 第20-22页 |
| 1.4 GAP-43的生理功能 | 第22-23页 |
| 1.4.1 突触的可塑性 | 第22-23页 |
| 1.4.2 轴突的导向性 | 第23页 |
| 1.4.3 对神经递质的调控 | 第23页 |
| 1.5 GAP-43的调节机制 | 第23-25页 |
| 2. 核因子NF-kB对周围神经损伤后修复与再生的影响 | 第25-30页 |
| 2.1 NF-kB的结构和生化特征 | 第25-26页 |
| 2.2 NF-kB在周围神经系统的表达及分布 | 第26页 |
| 2.3 NF-kB的生理功能 | 第26-30页 |
| 2.3.1 调控炎性反应 | 第26-27页 |
| 2.3.2 对瘢痕形成的影响 | 第27页 |
| 2.3.3 对轴突再生的影响 | 第27-28页 |
| 2.3.4 损伤神经元凋亡作用 | 第28-29页 |
| 2.3.5 神经病理性疼痛 | 第29-30页 |
| 第2部分 促进周围神经再生作用的常见药物 | 第30-34页 |
| 1. 神经营养类药物 | 第30页 |
| 2. 神经营养因子 | 第30-31页 |
| 3. 神经节苷脂 | 第31页 |
| 4. 激素类 | 第31页 |
| 5. 免疫抑制剂 | 第31-32页 |
| 6. 中草药复方和中药提取物 | 第32-34页 |
| 第3部分 苏木的化学成分分析及药理作用机理的研究进展 | 第34-40页 |
| 1. 苏木化学成分研究进展 | 第34-35页 |
| 2. 苏木有效成分的免疫作用机制研究进展 | 第35-40页 |
| 2.1 苏木及其提取物对免疫细胞的抑制作用 | 第35-37页 |
| 2.2 苏木及其提取物抗氧化性作用 | 第37页 |
| 2.3 苏木及其提取物的抗菌作用 | 第37页 |
| 2.4 苏木及其提取物对细胞因子的影响 | 第37-38页 |
| 2.5 苏木及其提取物对补体系统的作用 | 第38页 |
| 2.6 苏木及其提取物的抗肿瘤作用 | 第38-40页 |
| 第二章 巴西苏木素对Balb/c小鼠免疫机能影响的实验研究 | 第40-56页 |
| 第1部分 材料和方法 | 第40-46页 |
| 1 实验材料 | 第40-42页 |
| 1.1 主要试剂 | 第40页 |
| 1.2 实验试剂的配制 | 第40-41页 |
| 1.3 主要仪器和设备 | 第41-42页 |
| 1.4 实验动物的选取 | 第42页 |
| 2 实验方法 | 第42-46页 |
| 2.1 动物模型制作与分组 | 第42-43页 |
| 2.2 给药剂量和方法 | 第43页 |
| 2.3 动物饲养及管理 | 第43-44页 |
| 2.4 检测内容和方法 | 第44-45页 |
| 2.5 统计学分析 | 第45-46页 |
| 第2部分 实验结果 | 第46-52页 |
| 1. 体外用药对淋巴细胞转化能力的影响 | 第46-48页 |
| 2. 腹腔注射给药后的淋巴细胞增殖转化能力评价 | 第48-52页 |
| 第3部分 讨论 | 第52-56页 |
| 1 实验研究的背景 | 第52-53页 |
| 2 关于实验内容的探讨 | 第53-54页 |
| 2.1 实验动物的选择和动物模型的制作 | 第53页 |
| 2.2 研究方法与结果 | 第53-54页 |
| 3 小结 | 第54-56页 |
| 第三章 巴西苏木素对坐骨神经损伤后相关蛋白表达的影响 | 第56-84页 |
| 第1部分 材料和方法 | 第56-66页 |
| 1 实验材料 | 第56-59页 |
| 1.1 实验主要材料和来源 | 第56-57页 |
| 1.2 常规试剂的配制及准备 | 第57-58页 |
| 1.3 主要仪器和器材 | 第58页 |
| 1.4 实验动物 | 第58-59页 |
| 2 实验方法 | 第59-66页 |
| 2.1 动物模型制作与分组 | 第59页 |
| 2.2 给药方法和剂量 | 第59页 |
| 2.3 实验动物的饲养与管理 | 第59页 |
| 2.4 Western-blot法检测GAP-43和NF-kB的表达 | 第59-61页 |
| 2.5 Real-time PCR法检测GAP-43和NF-kB的表达 | 第61-64页 |
| 2.6 免疫组化检测GAP-43和NF-kB的表达 | 第64-65页 |
| 2.7 统计学分析 | 第65-66页 |
| 第2部分 实验结果 | 第66-80页 |
| 1 Western-blot法分析GAP-43表达结果 | 第66-67页 |
| 2 实时定量PCR分析GAP-43表达结果 | 第67-69页 |
| 3 Western-blot法分析NF-kB表达结果 | 第69-70页 |
| 4 实时定量PCR分析NF-kB表达结果 | 第70-73页 |
| 5 GAP-43免疫组化染色结果 | 第73-75页 |
| 6 NF-kB免疫组化染色结果 | 第75-80页 |
| 第3部分 讨论 | 第80-84页 |
| 1 实验内容的探讨 | 第80页 |
| 1.1 实验动物的选择和动物模型的制作 | 第80页 |
| 2 研究方法与结果的讨论 | 第80-82页 |
| 2.1 GAP-43表达的影响 | 第80-81页 |
| 2.2 NF-kB表达的影响 | 第81-82页 |
| 3 小结 | 第82-84页 |
| 第四章 巴西苏木素抑制周围神经损伤后产生的免疫反应促进神经再生的机制研究 | 第84-106页 |
| 第1部分 材料和方法 | 第84-90页 |
| 1 实验材料 | 第84-85页 |
| 1.1 实验主要材料和来源 | 第84页 |
| 1.2 主要实验试剂的配制及准备 | 第84-85页 |
| 1.3 主要仪器和器材 | 第85页 |
| 1.4 实验动物 | 第85页 |
| 2 实验方法 | 第85-90页 |
| 2.1 动物模型制作与分组 | 第85-86页 |
| 2.2 给药方法和剂量 | 第86页 |
| 2.3 动物饲养及管理 | 第86页 |
| 2.4 检查指标及检查方法 | 第86-90页 |
| 2.4.1 大体观察 | 第86页 |
| 2.4.2 坐骨神经功能指数测定 | 第86-87页 |
| 2.4.3 神经电生理检测 | 第87页 |
| 2.4.4 免疫组织化学染色形态学观察 | 第87-88页 |
| 2.4.5 比目鱼肌肌肉体重指数测定及组织学观察 | 第88页 |
| 2.4.6 神经元凋亡的检测(TUNEL法) | 第88-90页 |
| 第2部分 实验结果 | 第90-100页 |
| 1 大体观察 | 第90页 |
| 2 坐骨神经功能指数 | 第90-91页 |
| 3 神经电生理检测 | 第91-95页 |
| 4 神经及组织学观察 | 第95-97页 |
| 4.1 髓鞘固蓝染色 | 第95-96页 |
| 4.2 比目鱼肌肌肉体重指数测定及组织学观察 | 第96-97页 |
| 5 TUNEL染色结果 | 第97-100页 |
| 第3部分 讨论 | 第100-106页 |
| 1 实验背景 | 第100-101页 |
| 1.1 周围神经损伤后免疫反应对神经再生的影响 | 第100-101页 |
| 1.2 周围神经损伤后免疫抑制剂对神经再生的影响 | 第101页 |
| 2 关于实验内容的探讨 | 第101-104页 |
| 2.1 实验动物的选择和动物模型的制作 | 第101-102页 |
| 2.2 研究方法与结果 | 第102-104页 |
| 2.2.1 组织学观察 | 第102页 |
| 2.2.2 电生理检测 | 第102-103页 |
| 2.2.3 TUNEL染色观察 | 第103-104页 |
| 3 小结 | 第104-106页 |
| 第五章 全文结论 | 第106-108页 |
| 参考文献 | 第108-124页 |
| 攻读博士期间的研究成果 | 第124-126页 |
| 致谢 | 第126页 |
