| 摘要 | 第6-8页 |
| Abstract | 第8-9页 |
| 第1章 文献综述 | 第13-49页 |
| 1.1 引言 | 第13页 |
| 1.2 海风藤研究现状 | 第13-21页 |
| 1.2.1 海风藤化学成分研究 | 第13-17页 |
| 1.2.2 海风藤分离分析方法研究 | 第17-19页 |
| 1.2.2.1 海风藤的提取 | 第18页 |
| 1.2.2.2 海风藤的分离和分析研究 | 第18-19页 |
| 1.2.3 海风藤药理活性研究 | 第19-21页 |
| 1.3 超临界流体色谱 | 第21-42页 |
| 1.3.1 超临界流体色谱的发展历史 | 第21-25页 |
| 1.3.2 超临界流体色谱特点 | 第25-27页 |
| 1.3.3 SFC固定相研究 | 第27-34页 |
| 1.3.3.1 SFC固定相特点 | 第27页 |
| 1.3.3.2 SFC固定相的评价方法 | 第27-29页 |
| 1.3.3.3 SFC固定相特性研究 | 第29-34页 |
| 1.3.4 制备SFC相关理论 | 第34-42页 |
| 1.3.4.1 SFC进样条件对峰形的影响 | 第34-37页 |
| 1.3.4.2 SFC从分析到制备的放大策略 | 第37-42页 |
| 1.4 超临界流体色谱的应用 | 第42-45页 |
| 1.4.1 超临界流体色谱在制药领域的应用 | 第42-43页 |
| 1.4.2 超临界流体色谱在天然产物中的应用 | 第43-45页 |
| 1.5 超临界流体色谱与多维色谱 | 第45-47页 |
| 1.6 本文的研究思路和研究内容 | 第47-49页 |
| 第2章 海风藤SFC快速分析和RPLC/SFC二维分析方法的建立 | 第49-63页 |
| 2.1 引言 | 第49-50页 |
| 2.2 实验部分 | 第50-52页 |
| 2.2.1 试剂和材料 | 第50页 |
| 2.2.2 仪器 | 第50页 |
| 2.2.3 样品准备 | 第50-51页 |
| 2.2.4 色谱条件 | 第51-52页 |
| 2.3 结果和讨论 | 第52-61页 |
| 2.3.1 样品前处理和第一维RPLC分离 | 第52-57页 |
| 2.3.1.1 样品的提取和前处理 | 第52-56页 |
| 2.3.1.2 样品第一维RPLC分离 | 第56-57页 |
| 2.3.2 第二维UHPSFC快速分析优化 | 第57-58页 |
| 2.3.3 离线2D-RPLC/UHPSFC快速分析海风藤PE部位和EA部位 | 第58-61页 |
| 2.4 小结 | 第61-63页 |
| 第3章 手性超临界流体色谱用于海风藤中木脂素结构类似物的分 | 第63-80页 |
| 3.1 引言 | 第63-64页 |
| 3.2 实验部分 | 第64-66页 |
| 3.2.1 试剂和材料 | 第64页 |
| 3.2.2 仪器 | 第64-65页 |
| 3.2.3 色谱条件 | 第65-66页 |
| 3.3 结果和讨论 | 第66-79页 |
| 3.3.1 海风藤提取物的反相液相色谱制备 | 第66-68页 |
| 3.3.2 SFC色谱柱筛选 | 第68-70页 |
| 3.3.3 手性SFC分离条件优化 | 第70-73页 |
| 3.3.4 组分Fr. 18在CSP-1色谱柱上的纯化 | 第73-75页 |
| 3.3.5 化合物1和2在CSP-2色谱柱上的纯化 | 第75-77页 |
| 3.3.6 化合物3和4在CSP-2色谱柱上的纯化 | 第77-79页 |
| 3.4 小结 | 第79-80页 |
| 第4章 结合超临界流体色谱和液相色谱的海风藤系统制备策略 | 第80-100页 |
| 4.1 引言 | 第80-81页 |
| 4.2 实验部分 | 第81-83页 |
| 4.2.1 试剂和材料 | 第81页 |
| 4.2.2 仪器 | 第81页 |
| 4.2.3 样品准备 | 第81-82页 |
| 4.2.4 色谱条件 | 第82-83页 |
| 4.3 结果和讨论 | 第83-99页 |
| 4.3.1 基于SFC的快速组分制备 | 第84-91页 |
| 4.3.1.1 第一层次SFC纯化分离 | 第84-88页 |
| 4.3.1.2 第二层次制备SFC分离纯化 | 第88-91页 |
| 4.3.2 基于正交分离的化合物制备 | 第91-99页 |
| 4.3.2.1 第三层次的RPLC制备 | 第91-92页 |
| 4.3.2.2 第四层次手性SFC分离结构类似物 | 第92-99页 |
| 4.4 小结 | 第99-100页 |
| 第5章 烷基和苯基SFC固定相评价及其在海风藤分离中的应用 | 第100-119页 |
| 5.1 引言 | 第100页 |
| 5.2 实验部分 | 第100-105页 |
| 5.2.1 试剂和材料 | 第100-103页 |
| 5.2.2 样品配制 | 第103页 |
| 5.2.3 仪器 | 第103-104页 |
| 5.2.4 色谱柱 | 第104页 |
| 5.2.5 色谱条件 | 第104页 |
| 5.2.6 数据处理 | 第104-105页 |
| 5.3 结果与讨论 | 第105-117页 |
| 5.3.1 C8和苯基键合密度对SFC保留机理的影响 | 第105-109页 |
| 5.3.2 改性剂的考察 | 第109-111页 |
| 5.3.3 固定相正交性评价 | 第111-114页 |
| 5.3.4 非极性固定相在生物碱SFC分离中的应用 | 第114-117页 |
| 5.4 结论 | 第117-119页 |
| 第6章 总结与展望 | 第119-122页 |
| 参考文献 | 第122-140页 |
| 发表论文 | 第140-142页 |
| 致谢 | 第142-143页 |
| 附录1 | 第143-149页 |
