| 中文摘要 | 第4-7页 |
| Abstract | 第7-9页 |
| 第1章 绪论 | 第13-27页 |
| 1.1 GPCRs | 第13页 |
| 1.2 趋化因子受体及趋化因子 | 第13-14页 |
| 1.3 CXCR4 结构和二聚化 | 第14-16页 |
| 1.4 SDF-1 结构和二聚化 | 第16-17页 |
| 1.5 CXCR4 -8D 1 信号通路 | 第17-19页 |
| 1.6 CXCR4-SDF-1 与重要疾病 | 第19-22页 |
| 1.6.1 CXCR4-SDF-1 与肿瘤的关系 | 第19-20页 |
| 1.6.2 CXCR4-SDF-1 与造血功能和恶性血液疾病 | 第20-21页 |
| 1.6.3 CXCR4-SDF-1 与 HIV | 第21-22页 |
| 1.7 特异性 CXCR4 配体 | 第22-25页 |
| 1.7.1 小分子 CXCR4 配体 | 第22-23页 |
| 1.7.2 多肽类 CXCR4 配体 | 第23-25页 |
| 1.8 小结 | 第25-27页 |
| 第2章 CXCR4 二聚体多肽的设计、合成与生物活性研究 | 第27-59页 |
| 2.1 研究背景 | 第27-29页 |
| 2.2 实验设计 | 第29-32页 |
| 2.3 多肽的合成 | 第32-40页 |
| 2.3.1 同源二聚体多肽 3-19 的合成 | 第32-35页 |
| 2.3.2 同源二聚体多肽 21-27 的合成 | 第35-38页 |
| 2.3.3 异源二聚体多肽 28-32 的合成 | 第38-40页 |
| 2.4 二聚体多肽的受体结合活性 | 第40-51页 |
| 2.4.1 CXCR4 竞争性结合实验 | 第40页 |
| 2.4.2 DV3 同源二聚体多肽的结合活性筛选 | 第40-47页 |
| 2.4.3 SDF-11-8同源二聚体多肽的结合活性筛选 | 第47-49页 |
| 2.4.4 DV3-SDF-11-8异源二聚体多肽的结合活性筛选 | 第49-51页 |
| 2.5 二聚体多肽的肿瘤细胞迁移活性 | 第51-54页 |
| 2.5.1 肿瘤细胞迁移实验 | 第51页 |
| 2.5.2 肿瘤细胞迁移活性结果 | 第51-54页 |
| 2.6 二聚体多肽的钙离子释放活性 | 第54-55页 |
| 2.6.1 钙离子释放实验 | 第54页 |
| 2.6.2 钙离子释放活性结果 | 第54-55页 |
| 2.7 同源二聚体多肽 4 和 5 的体外稳定性 | 第55-57页 |
| 2.7.1 实验过程 | 第55-56页 |
| 2.7.2 体外稳定性结果 | 第56-57页 |
| 2.8 小结 | 第57-59页 |
| 第3章 应用于 CXCR4 竞争性结合实验的荧光多肽研究 | 第59-77页 |
| 3.1 研究背景 | 第59-61页 |
| 3.2 实验设计 | 第61-62页 |
| 3.3 实验部分 | 第62-68页 |
| 3.3.1 实验仪器与材料 | 第62-63页 |
| 3.3.2 多肽的合成 | 第63-65页 |
| 3.3.3 受体饱和浓度阈值 CT测定 | 第65-66页 |
| 3.3.4 CXCR4-12G5 竞争性结合实验 | 第66页 |
| 3.3.5 CXCR4-FITC-DV1 竞争性结合试实验 | 第66-67页 |
| 3.3.6 FITC-DV1 受体特异性实验 | 第67-68页 |
| 3.4 FITC-DV1 应用于 CXCR4 竞争性结合实验 | 第68-75页 |
| 3.4.1 FITC-DV1 的受体饱和浓度阈值 CT | 第68-69页 |
| 3.4.2 FITC-DV1 与 12G5 方法对比 | 第69-72页 |
| 3.4.3 FITC-DV1 的受体特异性 | 第72-73页 |
| 3.4.4 FITC-DV1 的结合常数(Ki) | 第73-75页 |
| 3.5 小结 | 第75-77页 |
| 第4章 结论 | 第77-79页 |
| 参考文献 | 第79-99页 |
| 附录 | 第99-147页 |
| 作者简介及攻读博士学位期间发表的文章 | 第147-148页 |
| 致谢 | 第148页 |
