| 摘要 | 第3-5页 |
| ABSTRACT | 第5-6页 |
| 目录 | 第7-9页 |
| 英文縮写及全文和中文对照表 | 第9-11页 |
| 第1章 引言 | 第11-13页 |
| 第2章 材料与方法 | 第13-23页 |
| 2.1 主要材料及试剂 | 第13-14页 |
| 2.2 实验主要仪器和设备 | 第14-15页 |
| 2.3 实验步骤 | 第15-22页 |
| 2.3.1 试剂的配制 | 第15-16页 |
| 2.3.2 实验分组及处理方法 | 第16页 |
| 2.3.3 HUVECs存活率的测定 | 第16-17页 |
| 2.3.4 HUVECs LDH水平的检测 | 第17页 |
| 2.3.5 HUVECs MDA水平的检测 | 第17页 |
| 2.3.6 HUVECs SOD水平的检测 | 第17页 |
| 2.3.7 HUVECs GSH-PX含量的检测 | 第17页 |
| 2.3.8 流式细胞仪检测细胞内ROS含量的变化 | 第17页 |
| 2.3.9 Annexin V-FITC和PI双标流式细胞仪检测细胞凋亡 | 第17-18页 |
| 2.3.10 流式细胞仪检测细胞内CI~-含量的变化 | 第18页 |
| 2.3.11 HUVECs AE_2mRNA表达检测 | 第18-20页 |
| 2.3.12 Western blotting法检测HUVECs SOD,AE_2蛋白的表达 | 第20-22页 |
| 2.4 数据处理 | 第22-23页 |
| 第3章 结果 | 第23-30页 |
| 3.1 SQS对高糖损伤血管内皮细胞保护作用的量效研究 | 第23-24页 |
| 3.1.1 各处理组对HUVECs存活率及LDH活性的影响 | 第23-24页 |
| 3.2 SQS对高糖损伤血管内皮细胞保护作用的机制研究 | 第24-30页 |
| 3.2.1 各处理组对HUVECs SOD及GSH-PX水平的影响 | 第24页 |
| 3.2.2 各处理组对高糖诱导HUVECs ROS含量的影响 | 第24-25页 |
| 3.2.3 各处理组对HUVECs MDA水平的影响 | 第25-26页 |
| 3.2.4 各处理组对HUVECs SOD蛋白表达的影响 | 第26-27页 |
| 3.2.5 各处理组对高糖诱导HUVECs凋亡的影响 | 第27-28页 |
| 3.2.6 各处理组对高糖诱导HUVECs氯离子浓度的影响 | 第28-29页 |
| 3.2.7 各处理组对HUVECsAE_2 mRNA和蛋白表达的影响 | 第29-30页 |
| 第4章 讨论 | 第30-33页 |
| 4.1 SQS对高糖血管内皮损伤的保护作用 | 第30页 |
| 4.2 SQS抗高糖血管内皮损伤的可能机制 | 第30-32页 |
| 4.3 本实验的不足之处 | 第32-33页 |
| 第5章 结论 | 第33-34页 |
| 致谢 | 第34-35页 |
| 参考文献 | 第35-38页 |
| 综述 | 第38-43页 |
| 参考文献 | 第42-43页 |
