| 中文摘要 | 第4-6页 |
| Abstract | 第6-8页 |
| 缩略语/符号说明 | 第11-13页 |
| 前言 | 第13-18页 |
| 研究现状、成果 | 第13-17页 |
| 研究目的、方法 | 第17-18页 |
| 一、兔BMSCs的分离、纯化、培养及鉴定 | 第18-28页 |
| 1.1 对象和方法 | 第18-21页 |
| 1.1.1 实验动物 | 第18页 |
| 1.1.2 主要实验设备 | 第18页 |
| 1.1.3 主要实验试剂和耗材 | 第18-19页 |
| 1.1.4 实验方法 | 第19-21页 |
| 1.2 结果 | 第21-24页 |
| 1.2.1 BMSCs光镜下细胞形态学观察 | 第21-22页 |
| 1.2.2 BMSCs的免疫荧光细胞化学染色鉴定结果 | 第22-23页 |
| 1.2.3 BMSCs的流式细胞仪检测鉴定结果 | 第23-24页 |
| 1.3 讨论 | 第24-27页 |
| 1.3.1 BMSCs在组织工程中的应用现状 | 第24页 |
| 1.3.2 BMSCs的分离培养方法 | 第24-25页 |
| 1.3.3 BMSCs的鉴定 | 第25-27页 |
| 1.4 小结 | 第27-28页 |
| 二、LIPUS对BMSCs增殖能力及向软骨细胞分化的影响 | 第28-44页 |
| 2.1 对象和方法 | 第28-34页 |
| 2.1.1 主要实验设备 | 第28页 |
| 2.1.2 主要实验试剂 | 第28-29页 |
| 2.1.3 实验所用超声设备配置及主要参数 | 第29-31页 |
| 2.1.4 实验方法 | 第31-34页 |
| 2.2 结果 | 第34-38页 |
| 2.2.1 光学显微镜下观察BMSCs形态变化 | 第34页 |
| 2.2.2 CCK-8 检测BMSCs增殖情况 | 第34-35页 |
| 2.2.3 II型胶原免疫荧光染色结果 | 第35-36页 |
| 2.2.4 番红O-固绿染色结果 | 第36-37页 |
| 2.2.5 BMSCs中mRNA的表达 | 第37-38页 |
| 2.3 讨论 | 第38-43页 |
| 2.3.1 LIPUS的应用现状 | 第38页 |
| 2.3.2 LIPUS可调节不同类型细胞增殖能力 | 第38-40页 |
| 2.3.3 关节软骨损伤是骨科临床面临的一大挑战 | 第40页 |
| 2.3.4 TGF-βs促进BMSCs向软骨细胞分化 | 第40-42页 |
| 2.3.5 LIPUS联合TGF-β1 促进BMSCs向软骨细胞分化的协同效应 | 第42-43页 |
| 2.4 小结 | 第43-44页 |
| 结论 | 第44-45页 |
| 参考文献 | 第45-57页 |
| 发表论文和参加科研情况说明 | 第57-59页 |
| 附录 | 第59-61页 |
| 综述 低强度脉冲超声(LIPUS)在骨关节与软组织损伤修复中的应用现状 | 第61-77页 |
| 综述参考文献 | 第68-77页 |
| 致谢 | 第77-79页 |
| 个人简历 | 第79页 |
