| 摘要 | 第4-6页 |
| Abstract | 第6-7页 |
| 第一章 前言 | 第10-14页 |
| 论文的主要研究内容 | 第13-14页 |
| 第二章 材料和方法 | 第14-29页 |
| 2.1 材料 | 第14-19页 |
| 2.1.1 组织标本 | 第14页 |
| 2.1.2 细胞 | 第14页 |
| 2.1.3 试剂 | 第14-19页 |
| 2.1.4 实验仪器 | 第19页 |
| 2.2 方法 | 第19-29页 |
| 2.2.1 Western blot操作流程 | 第19-21页 |
| 2.2.2 病理切片的免疫组化 | 第21-24页 |
| 2.2.3 细胞株的培养 | 第24页 |
| 2.2.4 TRA2β基因的si-RNA质粒 | 第24-25页 |
| 2.2.5 利用脂质体Lipofectamine 2000 介导基因转染 | 第25页 |
| 2.2.6 RT-PCR | 第25-27页 |
| 2.2.7 流式细胞仪（FCM）检测细胞周期的分布 | 第27-28页 |
| 2.2.8 CCK-8（cell counting kit-8）法检测细胞增殖活性 | 第28页 |
| 2.2.9 Transwell迁移实验 | 第28-29页 |
| 第三章 结果 | 第29-39页 |
| 3.1 TRA2β在胶质瘤组织中的表达 | 第29-31页 |
| 3.1.1 Western blot检测TRA2β在胶质瘤中的表达情况 | 第29页 |
| 3.1.2 免疫组化技术检测TRA2β和Ki-67 在胶质瘤石蜡切片组织中的表达 | 第29-30页 |
| 3.1.3 TRA2β和Ki-67 在胶质瘤组织中表达的相关性分析 | 第30-31页 |
| 3.2 TRA2β与临床病理学参数的关系 | 第31-32页 |
| 3.3 TRA2β的表达对胶质瘤患者生存率的影响 | 第32页 |
| 3.4 TRA2β在胶质瘤细胞中的表达 | 第32-33页 |
| 3.5 TRA2β对胶质瘤细胞增值的影响 | 第33-37页 |
| 3.5.0 血清饥饿释放对U87 细胞株的细胞周期影响 | 第33-34页 |
| 3.5.1 TRA2β在U87 细胞增殖过程中表达的变化 | 第34页 |
| 3.5.2 TRA2β表达下调对胶质瘤细胞周期及其相关蛋白的影响 | 第34-36页 |
| 3.5.3 CCK-8 法检测TRA2β与胶质瘤细胞株增殖情况 | 第36-37页 |
| 3.6 TRA2β对胶质瘤细胞迁移的影响 | 第37-39页 |
| 第四章 讨论 | 第39-43页 |
| 第五章 结论 | 第43-44页 |
| 参考文献 | 第44-49页 |
| 英文缩写词表 | 第49-51页 |
| 综述 | 第51-63页 |
| 综述参考文献 | 第59-63页 |
| 攻读硕士期间公开发表的论文 | 第63-64页 |
| 致谢 | 第64-65页 |
