| 摘要 | 第7-9页 |
| Abstract | 第9-10页 |
| 1 前言 | 第11-25页 |
| 1.1 山楂叶概述 | 第11-12页 |
| 1.1.1 山楂叶简介 | 第11页 |
| 1.1.2 山楂叶的化学成分 | 第11-12页 |
| 1.2 山楂叶的研究现状 | 第12-13页 |
| 1.3 黄酮类化合物概述 | 第13-23页 |
| 1.3.1 黄酮类化合物简介 | 第13-14页 |
| 1.3.2 黄酮类化合物的生理功能 | 第14-15页 |
| 1.3.3 黄酮类化合物在食品中的应用 | 第15-16页 |
| 1.3.4 黄酮类化合物的提取 | 第16-18页 |
| 1.3.5 黄酮类化合物的分离纯化 | 第18-21页 |
| 1.3.6 黄酮类化合物的分析及鉴定 | 第21-23页 |
| 1.4 研究目的、意义及内容 | 第23-25页 |
| 1.4.1 研究目的及意义 | 第23-24页 |
| 1.4.2 研究内容 | 第24-25页 |
| 2 材料与方法 | 第25-34页 |
| 2.1 实验材料 | 第25页 |
| 2.2 实验试剂 | 第25-26页 |
| 2.3 实验仪器 | 第26-27页 |
| 2.4 实验方法 | 第27-30页 |
| 2.4.1 不同采收期山楂叶中有效成分的测定 | 第27页 |
| 2.4.2 索氏提取法提取总黄酮 | 第27页 |
| 2.4.3 山楂叶黄酮提取工艺研究 | 第27-28页 |
| 2.4.4 超声波辅助双水相萃取法提取山楂叶黄酮和多糖 | 第28页 |
| 2.4.5 大孔树脂纯化山楂叶黄酮 | 第28-29页 |
| 2.4.6 葡聚糖凝胶柱Sephadex LH-20 层析分离黄酮 | 第29-30页 |
| 2.4.7 液质联用技术分析、鉴定山楂叶黄酮 | 第30页 |
| 2.5 分析方法 | 第30-33页 |
| 2.5.1 山楂叶中有效成分的测定 | 第30-32页 |
| 2.5.2 黄酮分配系数的测定 | 第32页 |
| 2.5.3 树脂筛选指标的测定 | 第32-33页 |
| 2.5.4 山楂叶黄酮的抗氧化性指标的测定 | 第33页 |
| 2.5.5 山楂叶黄酮纯度的测定 | 第33页 |
| 2.5.6 液质联用对黄酮分离组分的测定 | 第33页 |
| 2.6 数据分析 | 第33-34页 |
| 3 结果与分析 | 第34-74页 |
| 3.1 不同采收期山楂叶中有效成分的测定 | 第34页 |
| 3.2 直接水提法提取山楂叶黄酮的工艺优化 | 第34-39页 |
| 3.2.1 单因素实验 | 第34-38页 |
| 3.2.2 正交实验 | 第38-39页 |
| 3.2.3 验证实验 | 第39页 |
| 3.3 微波-超声波联合辅助法提取山楂叶黄酮的工艺优化 | 第39-47页 |
| 3.3.1 单因素实验 | 第39-43页 |
| 3.3.2 Plackett-Burman（PB）实验 | 第43-44页 |
| 3.3.3 响应面实验（BB实验） | 第44-47页 |
| 3.4 超声波辅助双水相法提取山楂叶黄酮和多糖的工艺研究 | 第47-63页 |
| 3.4.1 双水相体系的选择 | 第47-56页 |
| 3.4.2 超声波辅助PEG-硫酸铵双水相体系提取黄酮和多糖的工艺研究 | 第56-63页 |
| 3.5 大孔树脂纯化山楂叶黄酮的工艺研究 | 第63-69页 |
| 3.5.1 大孔树脂的筛选 | 第63-64页 |
| 3.5.2 D101树脂静态吸附解吸实验 | 第64-66页 |
| 3.5.3 D101树脂动态吸附解吸实验 | 第66-69页 |
| 3.5.4 树脂纯化山楂叶黄酮的纯度检测 | 第69页 |
| 3.6 山楂叶黄酮的分离检测及抗氧化性研究 | 第69-74页 |
| 3.6.1 葡聚糖凝胶柱层析分离黄酮 | 第69-70页 |
| 3.6.2 凝胶柱纯化后黄酮的纯度检测 | 第70页 |
| 3.6.3 山楂叶黄酮的抗氧化性测定 | 第70-72页 |
| 3.6.4 液质联用检测山楂叶黄酮组分 | 第72-74页 |
| 4 讨论 | 第74-77页 |
| 4.1 不同采收期山楂叶有效成分的测定 | 第74页 |
| 4.2 山楂叶黄酮的提取工艺研究 | 第74-75页 |
| 4.3 超声波辅助双水相萃取山楂叶黄酮和多糖的工艺研究 | 第75页 |
| 4.4 山楂叶黄酮的纯化及分离 | 第75-76页 |
| 4.5 山楂叶黄酮的抗氧化性研究 | 第76-77页 |
| 5 结论 | 第77-78页 |
| 参考文献 | 第78-89页 |
| 致谢 | 第89页 |
