| 中文摘要 | 第5-8页 |
| Abstract | 第8-11页 |
| 序言 | 第12-17页 |
| 1.ACR的理化性质和体内代谢 | 第12-13页 |
| 2.ACR的神经发育毒性研究现状 | 第13-14页 |
| 3.星形胶质细胞在神经发育中的作用 | 第14-15页 |
| 4.ACR对星形胶质细胞的影响研究现状 | 第15页 |
| 5.研究目的和意义 | 第15-17页 |
| 材料与方法 | 第17-29页 |
| 1. 实验材料 | 第17-19页 |
| 1.1 主要试剂 | 第17-18页 |
| 1.2 主要仪器和耗材 | 第18-19页 |
| 1.3 实验动物 | 第19页 |
| 2. 实验方法 | 第19-29页 |
| 2.1 常用试剂的配置 | 第19-21页 |
| 2.2 动物造模 | 第21-22页 |
| 2.3 动物取材 | 第22-24页 |
| 2.4 石蜡包埋和切片制作 | 第24-25页 |
| 2.5 苏木素-伊红染色（HE染色） | 第25页 |
| 2.6 免疫组织化学检测 | 第25-26页 |
| 2.7 Western blot检测 | 第26-28页 |
| 2.8 统计学分析 | 第28-29页 |
| 结果 | 第29-50页 |
| 1.孕鼠神经毒性表现 | 第29-31页 |
| 1.1 孕鼠神经行为学改变 | 第29页 |
| 1.2 孕鼠体重变化 | 第29-31页 |
| 2.胚胎发育毒性 | 第31-35页 |
| 2.1 新生鼠出生一般状况 | 第31-32页 |
| 2.2 新生鼠体重变化 | 第32-33页 |
| 2.3 1d断乳期大鼠神经毒性表现 | 第33-35页 |
| 2.3.1 1d断乳期大鼠神经行为学改变 | 第33-34页 |
| 2.3.2 1d断乳期大鼠体重变化 | 第34-35页 |
| 3. 新生鼠和 21d断乳期大鼠海马HE染色结果 | 第35-37页 |
| 3.1 新生鼠海马HE染色结果 | 第35-36页 |
| 3.2 21d断乳期大鼠海马HE染色结果 | 第36-37页 |
| 4. ACR对新生鼠海马GFAP表达的影响 | 第37-40页 |
| 4.1 新生鼠海马GFAP免疫组织化学检测结果 | 第37-39页 |
| 4.2 新生鼠海马GFAP Western blot半定量分析实验结果 | 第39-40页 |
| 5. ACR对新生鼠海马S-100β 表达的影响 | 第40-43页 |
| 5.1 新生鼠海马S-100β 免疫组织化学检测结果 | 第40-42页 |
| 5.2 新生鼠海马S-100β Western blot半定量分析实验结果 | 第42-43页 |
| 6. ACR对 21d断乳期大鼠海马GFAP表达的影响 | 第43-46页 |
| 6.1 21d断乳期大鼠海马GFAP免疫组织化学检测结果 | 第43-45页 |
| 6.2 21d断乳期大鼠海马GFAP Western blot半定量分析实验结果 | 第45-46页 |
| 7. ACR对 21d断乳期大鼠海马S-100β 表达的影响 | 第46-50页 |
| 7.1 21d断乳期大鼠海马S-100β 免疫组织化学检测结果 | 第46-48页 |
| 7.2 21d断乳期大鼠海马S-100β Western blot半定量分析实验结果 | 第48-50页 |
| 讨论 | 第50-61页 |
| 1.ACR具有胚胎发育毒性 | 第50-52页 |
| 2.ACR具有神经发育毒性 | 第52-54页 |
| 3.ACR对仔鼠海马GFAP表达的影响 | 第54-58页 |
| 3.1 ACR对新生鼠海马GFAP表达的影响 | 第54-56页 |
| 3.2 ACR对 21d断乳期大鼠海马GFAP表达的影响 | 第56-58页 |
| 4.ACR对仔鼠海马S-100β 表达的影响 | 第58-61页 |
| 4.1 ACR对新生鼠海马S-100β 表达的影响 | 第59-60页 |
| 4.2 ACR对 21d断乳期大鼠海马S-100β 表达的影响 | 第60-61页 |
| 结论 | 第61-62页 |
| 参考文献 | 第62-71页 |
| 中英文缩写语对照表 | 第71-72页 |
| 攻读学位期间发表的文章 | 第72-73页 |
| 附件 | 第73-81页 |
| 致谢 | 第81页 |
