| 中文摘要 | 第4-6页 |
| Abstract | 第6-7页 |
| 缩略语/符号说明 | 第12-13页 |
| 前言 | 第13-25页 |
| 研究现状、成果 | 第13-24页 |
| 研究目的、方法 | 第24-25页 |
| 一、胶质母细胞瘤中胶质瘤干细胞信号通路活化状态研究 | 第25-35页 |
| 1.1 对象和方法 | 第26-30页 |
| 1.1.1 病例资料 | 第26页 |
| 1.1.2 主要实验试剂与仪器 | 第26-27页 |
| 1.1.3 实验方法 | 第27-30页 |
| 1.2 结果 | 第30-33页 |
| 1.2.1 胶质瘤干细胞在胶质母细胞瘤中富集呈管状结构并且Notch通路高度活化 | 第30-32页 |
| 1.2.2 形成管状结构的胶质瘤干细胞中Notch1和DLL1共表达，部分向血管内皮细胞谱系分化 | 第32-33页 |
| 1.3 讨论 | 第33-34页 |
| 1.3.1 胶质瘤干细胞标志物的选择 | 第33页 |
| 1.3.2 胶质瘤干细胞形成管样结构的解读 | 第33-34页 |
| 1.4 小结 | 第34-35页 |
| 二、CD133+胶质瘤干细胞球的表达特征研究 | 第35-53页 |
| 2.1 对象和方法 | 第36-45页 |
| 2.1.1 研究对象 | 第36页 |
| 2.1.2 主要实验试剂与仪器 | 第36-37页 |
| 2.1.3 实验方法 | 第37-45页 |
| 2.2 结果 | 第45-51页 |
| 2.2.1 MACS分选CD133+ GSCs体外形成三维胶质瘤细胞球 | 第45-47页 |
| 2.2.2 Western blot检测CD133+胶质瘤细胞球的表达特征 | 第47-49页 |
| 2.2.3 免疫荧光染色检测CD133+胶质瘤细胞球的表达特征 | 第49-51页 |
| 2.3 讨论 | 第51-52页 |
| 2.3.1 CD133+胶质瘤干细胞球的培养 | 第51页 |
| 2.3.2 Notch通路对干细胞表型维持的关键作用 | 第51页 |
| 2.3.3 自主研发的悬浮细胞球免疫荧光染色装置及方法 | 第51-52页 |
| 2.4 小结 | 第52-53页 |
| 三、Arp2/3 复合体通过Notch通路维持胶质母细胞瘤干细胞表型 | 第53-76页 |
| 3.1 对象和方法 | 第54-59页 |
| 3.1.1 研究对象 | 第54页 |
| 3.1.2 主要实验试剂与仪器 | 第54页 |
| 3.1.3 实验方法 | 第54-59页 |
| 3.2 结果 | 第59-74页 |
| 3.2.1 抑制DLL1减弱GSC干细胞表型 | 第59-61页 |
| 3.2.2 抑制Arp2/3 复合体减弱GSC干细胞表型 | 第61-65页 |
| 3.2.3 外源性DLL1恢复ArpC受抑制导致的干细胞表型的缺失 | 第65-70页 |
| 3.2.4 ArpC调控DLL1囊泡从细胞质到细胞膜的转运 | 第70-73页 |
| 3.2.5 抑制ArpC功能减弱GSC体内致瘤能力 | 第73-74页 |
| 3.3 讨论 | 第74-75页 |
| 3.4 小结 | 第75-76页 |
| 全文结论 | 第76-78页 |
| 论文创新点 | 第78-80页 |
| 参考文献 | 第80-94页 |
| 发表论文和参加科研情况说明 | 第94-97页 |
| 附录 | 第97-98页 |
| 综述 PI3K/Akt/mTOR信号通路和Notch信号通路间信号交互作用在肿瘤中的研究进展 | 第98-118页 |
| 综述参考文献 | 第107-118页 |
| 致谢 | 第118-120页 |
| 个人简历 | 第120页 |
