| 摘要 | 第4-6页 |
| Abstract | 第6-7页 |
| 第一章 绪论 | 第13-44页 |
| 1.1 引言 | 第13-14页 |
| 1.2 酶的发展史 | 第14页 |
| 1.3 酶的分类 | 第14-16页 |
| 1.3.1 天然酶的分类 | 第14-15页 |
| 1.3.2 人造酶的分类 | 第15页 |
| 1.3.3 纳米酶的分类 | 第15-16页 |
| 1.4 纳米酶的制备 | 第16-21页 |
| 1.4.1 碳基纳米酶的制备 | 第16-18页 |
| 1.4.1.1 氧化石墨烯类纳米酶的制备 | 第16-17页 |
| 1.4.1.2 碳纳米管类纳米酶的制备 | 第17-18页 |
| 1.4.2 金属基纳米酶的制备 | 第18-20页 |
| 1.4.2.1 有序介孔硅封装的金纳米粒子纳米酶的制备 | 第18-19页 |
| 1.4.2.2 金纳米簇纳米酶的制备 | 第19-20页 |
| 1.4.3 金属氧化物基纳米酶的制备 | 第20-21页 |
| 1.4.3.1 氧化铈纳米酶的制备 | 第20-21页 |
| 1.5 纳米酶所能模拟的天然酶的种类 | 第21-23页 |
| 1.5.1 类过氧化物酶 | 第21-22页 |
| 1.5.2 类过氧化氢酶 | 第22页 |
| 1.5.3 类超氧化物歧化酶（SOD） | 第22页 |
| 1.5.4 类氧化酶 | 第22-23页 |
| 1.6 纳米酶的应用 | 第23-35页 |
| 1.6.1 纳米酶在过氧化氢（H_2O_2）检测中的应用 | 第23-24页 |
| 1.6.2 纳米酶在葡萄糖检测中的应用 | 第24-25页 |
| 1.6.3 纳米酶在核酸传感器中的应用 | 第25-27页 |
| 1.6.4 纳米酶在生物传感器中的应用 | 第27-28页 |
| 1.6.5 纳米酶在离子检测中的应用 | 第28-30页 |
| 1.6.6 纳米酶在免疫测定中的应用 | 第30-32页 |
| 1.6.7 纳米酶在癌细胞检测中的应用 | 第32-35页 |
| 1.7 论文选题与研究内容 | 第35-37页 |
| 参考文献 | 第37-44页 |
| 第二章 磁性碳笼子封装的钯纳米粒子（PdNPs/MCNC）的制备、表征及其在癌细胞靶向检测和多色成像中的应用 | 第44-75页 |
| 2.1 引言 | 第44-46页 |
| 2.2 实验药品、仪器 | 第46页 |
| 2.2.1 实验药品 | 第46页 |
| 2.2.2 实验仪器 | 第46页 |
| 2.3 PdNPs/MCNC纳米酶和目标分子 6（NNPH）的制备及其在癌细胞靶向检测和多色成像中的应用 | 第46-51页 |
| 2.3.1 碳纳米球（CNSs）的制备 | 第46-47页 |
| 2.3.2 二乙烯三胺修饰的碳纳米球（CNSs-DETA）的制备 | 第47页 |
| 2.3.3 3, 4-二羟基苯甲醛修饰的碳纳米球（CNSs-DETA-DIB）的制备 | 第47-48页 |
| 2.3.4 磁性碳笼子（Fe_3O_4 NPs/CNCs）的制备 | 第48页 |
| 2.3.5 PdNPs/MCNC的制备 | 第48页 |
| 2.3.6 DIB-PEG-NH-FA的制备 | 第48页 |
| 2.3.7 FA-PdNPs/MCNC的制备 | 第48页 |
| 2.3.8 5-硝基苊（2）的合成 | 第48-49页 |
| 2.3.9 4-硝基-1,8-萘二甲酸酐（3）的合成 | 第49页 |
| 2.3.10 4-硝基-1,8-萘酰亚胺（4）的合成 | 第49页 |
| 2.3.11 4-氨基-1,8-萘酰亚胺（5）的合成 | 第49页 |
| 2.3.12 目标分子（6）的合成 | 第49-50页 |
| 2.3.13 高效纳米酶PdNPs/MCNC催化目标分子（6）生成化合物（5）的实验 | 第50页 |
| 2.3.14 UV-vis光谱的测定 | 第50页 |
| 2.3.15 荧光光谱的测定 | 第50页 |
| 2.3.16 细胞毒性实验 | 第50-51页 |
| 2.3.17 细胞成像实验 | 第51页 |
| 2.3.18 比色法检测癌细胞 | 第51页 |
| 2.4 结果与讨论 | 第51-66页 |
| 2.4.1 PdNPs/MCNC的TEM表征 | 第51-54页 |
| 2.4.2 纳米酶PdNPs/MCNC的X-射线光电能谱（XPS）表征 | 第54-55页 |
| 2.4.3 纳米酶PdNPs/MCNC的X-射线粉末衍射谱（XRD）和磁学性质（VSM）表征 | 第55-56页 |
| 2.4.4 PdNPs/MCNC的红外（FT-IR）表征 | 第56-57页 |
| 2.4.5 PdNPs/MCNC纳米复合材料与目标分子（6）的作用机理 | 第57页 |
| 2.4.6 实验参数的优化 | 第57-59页 |
| 2.4.7 催化剂PdNPs/MCNC专一性与催化、回收效果研究 | 第59-60页 |
| 2.4.8 催化剂PdNPs/MCNC稳定性研究 | 第60-61页 |
| 2.4.9 目标分子（6）的紫外可见光谱（UV-vis）性质研究 | 第61-62页 |
| 2.4.10 目标分子（6）的荧光光谱性质研究 | 第62页 |
| 2.4.11 PdNPs/MCNC的细胞毒性测试 | 第62-63页 |
| 2.4.12 靶向检测癌细胞和癌细胞多色成像机理探究 | 第63-65页 |
| 2.4.13 比色法检测癌细胞 | 第65-66页 |
| 2.5 结论 | 第66-67页 |
| 参考文献 | 第67-70页 |
| 附录 | 第70-75页 |
| 第三章 磁性碳纳米球封装的金纳米粒子的制备、表征及其在有机染料甲基蓝（MB）选择性降解中的应用 | 第75-89页 |
| 3.1 引言 | 第75-77页 |
| 3.2 实验药品及仪器 | 第77-78页 |
| 3.2.1 实验药品 | 第77页 |
| 3.2.2 实验仪器 | 第77-78页 |
| 3.3 Au NPs/MCNSs的制备 | 第78-79页 |
| 3.3.1 碳纳米球（CNSs）的制备 | 第78页 |
| 3.3.2 二乙烯三胺修饰的碳纳米球（CNSs-DETA）的制备 | 第78页 |
| 3.3.3 3, 4-二羟基苯甲醛修饰的碳纳米球（CNSs-DETA-DIB）的制备 | 第78页 |
| 3.3.4 磁性碳纳米球（Fe3O4 NPs/CNSs）的制备 | 第78页 |
| 3.3.5 Au NPs/MCNSs的制备 | 第78-79页 |
| 3.4 结果与讨论 | 第79-86页 |
| 3.4.1 Au NPs/MCNSs的TEM表征 | 第79-80页 |
| 3.4.2 纳米酶Au NPs/MCNSs的X-射线光电能谱（XPS）表征 | 第80-81页 |
| 3.4.3 纳米酶Au NPs/MCNSs的X-射线粉末衍射（XRD）和磁学性质（VSM）表征 | 第81-82页 |
| 3.4.4 Au NPs/MCNSs的红外（FT-IR）表征 | 第82-83页 |
| 3.4.5 Au NPs/MCNSs纳米复合材料对有机混合染料降解性能的测试 | 第83-86页 |
| 3.5 结论 | 第86-87页 |
| 参考文献 | 第87-89页 |
| 第四章 基于金汞齐催化的一种可逆的比色、荧光双重信号放大实验及其在汞离子（Hg2+）可视化检测中的应用 | 第89-107页 |
| 4.1 引言 | 第89-91页 |
| 4.2 实验药品与仪器 | 第91-92页 |
| 4.2.1 实验药品 | 第91页 |
| 4.2.2 实验仪器 | 第91-92页 |
| 4.2.3 计算公式 | 第92页 |
| 4.3 基于金汞齐（Au~0/Hg~0）催化的一种可逆的比色、荧光双重信号放大实验及其在汞离子（Hg~(2+)）可视化检测中的应用 | 第92页 |
| 4.3.1 金纳米粒子（Au NPs）的合成 | 第92页 |
| 4.3.2 汞离子检测方案 | 第92页 |
| 4.4 结果与讨论 | 第92-101页 |
| 4.4.1 金纳米粒子及金汞齐的表征 | 第92-93页 |
| 4.4.2 该实验的检测机理探究 | 第93-94页 |
| 4.4.3 比色、荧光汞离子纸传感器的制备及其可逆性研究 | 第94-95页 |
| 4.4.4 最佳实验条件的筛选 | 第95-97页 |
| 4.4.5 该比色、荧光检测体系对汞离子的选择性、竞争性实验 | 第97-98页 |
| 4.4.6 罗丹明B的紫外和荧光滴定实验 | 第98-99页 |
| 4.4.7 该检测体系在实际水样检测中的应用 | 第99-100页 |
| 4.4.8 纸传感器对汞离子的可视化检测 | 第100-101页 |
| 4.5 结论 | 第101-102页 |
| 参考文献 | 第102-105页 |
| 附录 | 第105-107页 |
| 总结和展望 | 第107-109页 |
| （一）总结 | 第107-108页 |
| （二）展望 | 第108-109页 |
| 在学期间的研究成果 | 第109-110页 |
| 一、发表论文 | 第109页 |
| 二、参与课题 | 第109-110页 |
| 致谢 | 第110页 |
