| 摘要 | 第2-6页 |
| Abstract | 第6-9页 |
| 引言 | 第13-15页 |
| 第一章 植酸不同水解率产物的制备及其对结直肠癌细胞增殖抑制作用的研究 | 第15-34页 |
| 1.前言 | 第15-16页 |
| 2.材料和方法 | 第16-23页 |
| 2.1 实验细胞 | 第16页 |
| 2.2 主要试剂 | 第16-17页 |
| 2.3 主要仪器 | 第17页 |
| 2.4 实验采用软件 | 第17-18页 |
| 2.5 植酸吸光度-浓度标准曲线的制备 | 第18页 |
| 2.6 不同水解植酸酶的水解率-时间效应曲线绘制 | 第18-19页 |
| 2.7 植酸不同水解率产物的制备 | 第19页 |
| 2.8 植酸及其不同水解率产物对不同结直肠癌细胞株增殖抑制实验 | 第19页 |
| 2.9 细胞迁移实验检测细胞迁移活性的变化 | 第19-20页 |
| 2.10 实时定量PCR（qRT-PCR）方法检测PI3K/AKT信号通路相关mRNA表达 | 第20-22页 |
| 2.11 细胞原位蛋白酶联免疫吸附测定方法（Cell based ELISA）检测AKT及pAKT表达 | 第22页 |
| 2.12 AKT蛋白抑制实验 | 第22页 |
| 2.13 配体-蛋白分子对接分析实验 | 第22-23页 |
| 2.14 统计分析 | 第23页 |
| 3 结果 | 第23-31页 |
| 3.1 植酸吸光度-浓度标准曲线的绘制 | 第23页 |
| 3.2 不同水解酶水解率-时间效应曲线绘制 | 第23-24页 |
| 3.3 植酸及其不同水解率产物对不同结直肠癌细胞株的增殖抑制作用 | 第24-25页 |
| 3.4 细胞迁移实验检测植酸及其不同水解率产物对SW620细胞迁移性的影响 | 第25-27页 |
| 3.5 实时定量PCR（qRT-PCR）方法检测植酸及其不同水解率产物对SW620细胞PI3K/AKT信号通路相关mRNA表达 | 第27-28页 |
| 3.6 细胞原位蛋白酶联免疫吸附测定方法（Cell based ELISA）检测植酸及其不同水解率产物对SW620细胞AKT及pAKT蛋白的表达 | 第28页 |
| 3.7 AKT蛋白抑制实验检测植酸及其不同水解率产物对AKT蛋白被抑制的SW620细胞增殖活性的影响 | 第28-29页 |
| 3.8 植酸及其次级磷酸化形式通过配体-蛋白分子模拟对接实验分析与AKT的结合效果 | 第29-31页 |
| 4.讨论 | 第31-33页 |
| 5.小结 | 第33-34页 |
| 第二章 植酸不同水解率产物对结直肠癌移植瘤小鼠模型PI3K/AKT/VEGF信号通路的影响 | 第34-60页 |
| 1.前言 | 第34-35页 |
| 2 材料和方法 | 第35-42页 |
| 2.1 实验动物 | 第35页 |
| 2.2 实验细胞 | 第35页 |
| 2.3 主要试剂 | 第35页 |
| 2.4 主要仪器 | 第35-36页 |
| 2.5 结直肠癌移植瘤小鼠分组及模型制备方法 | 第36-37页 |
| 2.6 小鼠生长情况及肿瘤发生情况 | 第37页 |
| 2.7 病理学观察 | 第37页 |
| 2.8 实时定量PCR（qRT-PCR）方法检测PI3K/AKT/VEGF信号通路相关mRNA的表达 | 第37-38页 |
| 2.9 蛋白印迹（Western-blot）方法检测PI3K/AKT/VEGF信号通路相关蛋白的表达 | 第38-42页 |
| 2.10 数据处理 | 第42页 |
| 3.结果 | 第42-55页 |
| 3.1 植酸及其不同水解率产物对结直肠癌移植瘤小鼠模型肿瘤生长的抑制作用 | 第42-44页 |
| 3.2 结直肠癌移植瘤小鼠肿瘤病理学观察 | 第44-45页 |
| 3.3 实时定量PCR（qRT-PCR）方法检测植酸及其不同水解率产物对结直肠癌移植瘤小鼠PI3K/AKT/VEGF信号通路相关mRNA的表达 | 第45-50页 |
| 3.4 蛋白印迹（Western-blot）方法检测植酸及其不同水解率产物对结直肠癌移植瘤小鼠PI3K/AKT/VEGF信号通路相关蛋白的表达 | 第50-55页 |
| 4.讨论 | 第55-59页 |
| 5.小结 | 第59-60页 |
| 结论 | 第60-61页 |
| 后续研究设想 | 第61-62页 |
| 参考文献 | 第62-68页 |
| 综述 植酸及其次级磷酸化形式的生物作用及制备方式的研究进展 | 第68-84页 |
| 综述参考文献 | 第81-84页 |
| 攻读学位期间的研究成果 | 第84-85页 |
| 附录 | 第85-87页 |
| 致谢 | 第87-88页 |
