| 摘要 | 第6-9页 |
| abstract | 第9-11页 |
| 第一章 绪论 | 第16-33页 |
| 1.1 研究背景 | 第16-17页 |
| 1.2 杜仲的栽培模式 | 第17-22页 |
| 1.2.1 杜仲乔林栽培模式 | 第17-18页 |
| 1.2.2 杜仲果园栽培模式 | 第18-19页 |
| 1.2.3 杜仲雄花园栽培模式 | 第19-20页 |
| 1.2.4 杜仲剥皮再生林栽培模式 | 第20-21页 |
| 1.2.5 杜仲叶林栽培模式 | 第21-22页 |
| 1.3 杜仲的不同成分 | 第22-28页 |
| 1.3.1 生物活性成分 | 第22-25页 |
| 1.3.2 杜仲胶 | 第25-26页 |
| 1.3.3 杜仲籽油 | 第26-27页 |
| 1.3.4 杜仲木质纤维素 | 第27-28页 |
| 1.4 杜仲不同成分的提取利用方法 | 第28-30页 |
| 1.5 杜仲资源开发存在的问题 | 第30-31页 |
| 1.6 选题的目的、意义及研究内容 | 第31-33页 |
| 第二章 杜仲2种栽培模式下光合生理、化学成分与生物量动态变化研究 | 第33-54页 |
| 2.1 引言 | 第33-34页 |
| 2.2 材料与方法 | 第34-39页 |
| 2.2.1 试验地及材料 | 第34-35页 |
| 2.2.2 土壤水分测定 | 第35页 |
| 2.2.3 光合光响应曲线 | 第35-36页 |
| 2.2.4 两种杜仲木材共聚焦拉曼光谱、化学成分和元素分析之间的差异 | 第36-37页 |
| 2.2.5 二维核磁共振分析杜仲木材中的木质素结构 | 第37页 |
| 2.2.6 杜仲次生代谢物质含量检测方法 | 第37-39页 |
| 2.2.7 数据统计分析 | 第39页 |
| 2.3 结果与讨论 | 第39-53页 |
| 2.3.1 土壤水分含量与植物生长 | 第39-40页 |
| 2.3.2 光合生理特性比较 | 第40-43页 |
| 2.3.3 杜仲木材拉曼光谱和化学成分表征 | 第43-46页 |
| 2.3.4 杜仲木材木质素结构表征 | 第46-49页 |
| 2.3.5 杜仲叶片次生代谢物质动态积累变化 | 第49-50页 |
| 2.3.6 两种栽培模式生物量对比分析 | 第50-53页 |
| 2.4 小结 | 第53-54页 |
| 第三章 基于生物质精炼的杜仲叶和皮中4种化学物质分级提取分离及表征 | 第54-68页 |
| 3.1 引言 | 第54页 |
| 3.2 材料与方法 | 第54-58页 |
| 3.2.1 材料和化学试剂 | 第54-55页 |
| 3.2.2 浸膏和多糖的分离 | 第55-56页 |
| 3.2.3 酶水解分离杜仲胶 | 第56页 |
| 3.2.4 生物活性物质含量的测定 | 第56-58页 |
| 3.2.5 多糖分析 | 第58页 |
| 3.2.6 杜仲胶的特性 | 第58页 |
| 3.3 结果与讨论 | 第58-67页 |
| 3.3.1 杜仲树皮和树叶化学组分及其得率 | 第58-59页 |
| 3.3.2 浸膏中的生物活性成分的含量 | 第59-61页 |
| 3.3.3 杜仲多糖的成分分析 | 第61-62页 |
| 3.3.4 杜仲多糖的红外光谱分析 | 第62-63页 |
| 3.3.5 杜仲多糖的分子量分析 | 第63页 |
| 3.3.6 富含杜仲胶基质酶水解分析 | 第63-65页 |
| 3.3.7 杜仲胶的核磁共振分析 | 第65-66页 |
| 3.3.8 杜仲胶的分子量分析 | 第66-67页 |
| 3.4 小结 | 第67-68页 |
| 第四章 自水解和有机溶剂脱木素协同处理对杜仲木材酶水解效率的影响 | 第68-88页 |
| 4.1 引言 | 第68-69页 |
| 4.2.材料和方法 | 第69-74页 |
| 4.2.1 实验材料和试剂 | 第69页 |
| 4.2.2 自水解和有机溶剂法脱木质素的过程 | 第69-71页 |
| 4.2.3 低聚木糖的检测 | 第71页 |
| 4.2.4 抑制物的检测 | 第71页 |
| 4.2.5 木质素样品的表征 | 第71-73页 |
| 4.2.6 富含纤维素基质的表征 | 第73-74页 |
| 4.2.7 酶水解过程 | 第74页 |
| 4.3 结果与讨论 | 第74-87页 |
| 4.3.1 化学成分分析和集成过程的质量平衡 | 第74-76页 |
| 4.3.2 木质素样本的分子量分析 | 第76-77页 |
| 4.3.3 木质素样品核磁共振分析 | 第77-83页 |
| 4.3.4 富含纤维素基质的形态学特征 | 第83-84页 |
| 4.3.5 XRD和CP-MAS13C NMR富含纤维素残渣的表征 | 第84-86页 |
| 4.3.6 富含纤维素基质的酶水解效率 | 第86-87页 |
| 4.4 小结 | 第87-88页 |
| 第五章 蒸汽爆破和碱性过氧化氢脱木素协同预处理对杜仲木材酶水解效率的影响 | 第88-108页 |
| 5.1 引言 | 第88-89页 |
| 5.2 材料和方法 | 第89-91页 |
| 5.2.1 材料和试剂 | 第89页 |
| 5.2.2 预处理 | 第89-90页 |
| 5.2.3 酶水解过程 | 第90-91页 |
| 5.2.4 半纤维素表征 | 第91页 |
| 5.2.5 木质素的表征 | 第91页 |
| 5.2.6 富含纤维素基质的表征 | 第91页 |
| 5.2.7 富含纤维素基质的表面积和孔径表征 | 第91页 |
| 5.3 结果分析 | 第91-107页 |
| 5.3.1 木质素得率和纯度 | 第91-93页 |
| 5.3.2 木质素的分子量 | 第93-94页 |
| 5.3.3 木质素的核磁共振表征 | 第94-100页 |
| 5.3.4 半纤维素的糖分析和二维核磁共振表征 | 第100-102页 |
| 5.3.5 富含纤维素的基质的表面特征和比表面积 | 第102-103页 |
| 5.3.6 富含纤维素基质的XRD和CP-MAS 13C NMR表征 | 第103-105页 |
| 5.3.7 富含纤维素基质的酶水解分析 | 第105-106页 |
| 5.3.8 质量平衡过程 | 第106-107页 |
| 5.4 小结 | 第107-108页 |
| 第六章 杜仲自水解预处理对杜仲半纤维素与活性炭性能和结构的影响 | 第108-143页 |
| 6.1 引言 | 第108-109页 |
| 6.2 材料与方法 | 第109-114页 |
| 6.2.1 试验地及材料 | 第109页 |
| 6.2.2 自水解过程 | 第109-110页 |
| 6.2.3 活性炭的制备 | 第110页 |
| 6.2.4 液体组分的表征 | 第110-111页 |
| 6.2.5 预处理基质的表征 | 第111页 |
| 6.2.6 不可冷凝气体表征 | 第111页 |
| 6.2.7 活性炭样品的表征 | 第111-112页 |
| 6.2.8 活性炭催化分解甲烷 | 第112-114页 |
| 6.3 结果与分析 | 第114-141页 |
| 6.3.1 自水解处理过程中液体组分的p H和降解产物 | 第114-116页 |
| 6.3.2 单糖组分和半纤维素的核磁共振分析 | 第116-120页 |
| 6.3.3 预处理基质成分分析和元素分析 | 第120-123页 |
| 6.3.4 预处理基质FT-IR光谱分析 | 第123页 |
| 6.3.5 预处理基质的热重分析 | 第123-125页 |
| 6.3.6 预处理基质的表面形态和比表面积 | 第125-127页 |
| 6.3.7 预处理基质XRD和CP-MAS 13C NMR表征 | 第127-129页 |
| 6.3.8 活性炭的比表面积、孔体积和孔径大小分析 | 第129-132页 |
| 6.3.9 活性炭的形态学表征 | 第132-134页 |
| 6.3.10 活性炭的红外光谱分析 | 第134-135页 |
| 6.3.11 活性炭的微晶结构表征 | 第135-137页 |
| 6.3.12 炭活化过程中不可冷凝气体的组分分析 | 第137-138页 |
| 6.3.13 产物的质量平衡 | 第138-140页 |
| 6.3.14 活性炭催化甲烷分解制氢 | 第140-141页 |
| 6.4 小结 | 第141-143页 |
| 第七章 结论与展望 | 第143-145页 |
| 7.1 本论文主要结论 | 第143-144页 |
| 7.2 本论文的创新点 | 第144页 |
| 7.3 对今后深入研究的建议 | 第144-145页 |
| 参考文献 | 第145-158页 |
| 致谢 | 第158-160页 |
| 作者简介 | 第160-164页 |
