| 缩写词 | 第1-10页 |
| 摘要 | 第10-14页 |
| Abstract | 第14-19页 |
| 第一章 引言 | 第19-31页 |
| 1 植物超氧化物歧化酶研究进展 | 第20-21页 |
| 2 植物SOD基因的分子克隆研究进展 | 第21-22页 |
| 3 植物SOD基因的表达调控研究进展 | 第22-24页 |
| 4 逆境胁迫与植物SOD基因的表达研究进展 | 第24-25页 |
| 5 SOD基因过表达对植物抗逆性的影响 | 第25-26页 |
| 6 植物启动子研究进展 | 第26-28页 |
| 7 香蕉抗逆分子生物学研究进展 | 第28-29页 |
| 8 本项目研究的意义及主要内容 | 第29-31页 |
| ·本项目研究的意义 | 第29-30页 |
| ·本项目主要研究内容 | 第30-31页 |
| 第二章 香蕉SOD家族基因的全基因组分析与克隆 | 第31-71页 |
| 第一节 基于基因组数据库的野生蕉SOD基因的分析 | 第31-38页 |
| 1 数据检索与收集 | 第31-32页 |
| 2 数据分析方法 | 第32页 |
| 3 结果与分析 | 第32-37页 |
| ·小果野蕉‘DH-Pahang’SOD候选基因的获得与分析 | 第32-33页 |
| ·野蕉‘PKW’SOD候选基因的获得与分析 | 第33-35页 |
| ·两个野生蕉SOD家族基因的比较与聚类分析 | 第35-37页 |
| 4 讨论 | 第37-38页 |
| ·野蕉PKW中两条含Cu/ZnSOD序列的嵌合基因是否仍具有SOD功能 | 第37页 |
| ·香蕉可能含有11～13个具有SOD功能的基因 | 第37-38页 |
| 第二节 福建天宝蕉超氧化物歧化酶SOD基因家族的克隆 | 第38-63页 |
| 1 材料 | 第38-39页 |
| 2 方法 | 第39-42页 |
| ·福建天宝蕉DNA和总RNA的提取及cDNA的合成 | 第39页 |
| ·福建天宝蕉SOD基因家族的引物设计与克隆 | 第39-41页 |
| ·目的片段的回收与测序 | 第41-42页 |
| ·序列分析 | 第42页 |
| 3 结果与分析 | 第42-61页 |
| ·福建天宝蕉SOD基因家族cDNA全长序列的获得 | 第42-52页 |
| ·Cu/ZnSOD(MaCSD)基因亚家族不同成员cDNA全长序列的获得 | 第42-46页 |
| ·MnSOD(MaMSD)基因亚家族不同成员cDNA全长序列的获得 | 第46-49页 |
| ·FeSOD(MaFSD)基因亚家族不同成员cDNA全长序列的获得 | 第49-52页 |
| ·福建天宝蕉SOD基因家族DNA序列的获得 | 第52-54页 |
| ·Cu/ZnSOD(MaCSD)基因亚家族不同成员DNA序列的获得 | 第52-53页 |
| ·MnSOD(MaMSD)基因亚家族不同成员DNA序列的获得 | 第53页 |
| ·FeSOD(MaFSD)基因亚家族不同成员DNA序列的获得 | 第53-54页 |
| ·福建天宝蕉SOD基因家族不同转录本的成因分析 | 第54-55页 |
| ·福建天宝蕉SOD基因家族核酸序列的特征分析 | 第55-59页 |
| ·福建天宝蕉SOD基因家族的基因结构分析 | 第59页 |
| ·福建天宝蕉SOD基因家族在染色体上的分布 | 第59-61页 |
| 4 讨论 | 第61-63页 |
| ·福建天宝蕉SOD基因家族具有12个不同成员 | 第61-62页 |
| ·福建天宝蕉SOD基因家族转录本的多样性 | 第62-63页 |
| 第三节 香蕉不同基因组类型SOD基因的比较分析 | 第63-71页 |
| 1 材料 | 第63页 |
| 2 方法 | 第63-64页 |
| ·福州野生蕉SOD基因家族的克隆 | 第63-64页 |
| ·SOD基因家族序列的比较分析 | 第64页 |
| ·共线性分析与复制时间的计算 | 第64页 |
| 3 结果与分析 | 第64-69页 |
| ·福州野生蕉SOD基因家族cDNA序列的获得 | 第64-65页 |
| ·香蕉不同基因组类型SOD基因的比较分析 | 第65-67页 |
| ·香蕉SOD基因的扩张模式分析 | 第67-69页 |
| 4 讨论 | 第69-71页 |
| ·香蕉不同基因组类型的SOD基因存在差异 | 第69-70页 |
| ·香蕉的SOD家族基因随着香蕉进化发生数量扩张 | 第70-71页 |
| 第三章 香蕉SOD基因家族的生物信息学分析 | 第71-86页 |
| 1 材料 | 第71页 |
| 2 方法 | 第71-72页 |
| ·生物信息学分析方法 | 第71-72页 |
| ·亚细胞定位表达载体的构建与瞬时表达 | 第72页 |
| 3 结果与分析 | 第72-84页 |
| ·香蕉SOD蛋白的基本理化性质比较分析 | 第72-73页 |
| ·香蕉SOD蛋白的信号肽、跨膜结构及亚细胞定位的预测分析 | 第73-76页 |
| ·香蕉SOD家族部分成员的亚细胞定位验证 | 第76-77页 |
| ·香蕉SOD蛋白的磷酸化位点预测与分析 | 第77-78页 |
| ·香蕉SOD蛋白的同源性和结构域分析 | 第78-81页 |
| ·香蕉Cu/ZnSOD蛋白的同源性与结构域分析 | 第78-79页 |
| ·香蕉MnSOD蛋白的同源性与结构域分析 | 第79-80页 |
| ·香蕉FeSOD蛋白的同源性与结构域分析 | 第80-81页 |
| ·香蕉SOD家族的系统进化分析 | 第81-84页 |
| 4 讨论 | 第84-86页 |
| ·香蕉SOD家族蛋白亚细胞定位的差异 | 第84-85页 |
| ·香蕉SOD家族蛋白可能由不同磷酸化修饰调控 | 第85-86页 |
| 第四章 香蕉SOD基因家族启动子的克隆与分析 | 第86-106页 |
| 1 材料 | 第86页 |
| 2 方法 | 第86-87页 |
| ·引物设计与启动子克隆 | 第86页 |
| ·启动子序列分析方法 | 第86-87页 |
| 3 结果与分析 | 第87-104页 |
| ·MaSOD基因家族启动子序列的获得 | 第87-88页 |
| ·MaSOD基因家族核心启动子区及转录起始位点的预测分析 | 第88-97页 |
| ·MaSOD基因家族启动子顺式元件的功能预测分析 | 第97-104页 |
| ·MaSOD基因家族不同成员启动子中核心元件分析 | 第98页 |
| ·MaSOD基因家族不同成员启动子中光反应元件的比较 | 第98-99页 |
| ·MaSOD基因家族不同成员启动子中胁迫应答元件的比较 | 第99页 |
| ·MaSOD基因家族不同成员启动子中激素应答元件的比较 | 第99-100页 |
| ·MaSOD基因家族不同成员启动子中其他顺式元件的分析 | 第100-104页 |
| 4 讨论 | 第104-106页 |
| ·香蕉SOD基因家族不同成员的启动子序列具有较大差异 | 第104页 |
| ·香蕉SOD基因家族启动子活性可能受光、逆境胁迫和不同激素的诱导 | 第104-106页 |
| 第五章 香蕉SOD基因家族在非生物胁迫和激素处理下的表达分析 | 第106-117页 |
| 1 材料与胁迫处理 | 第106页 |
| 2 方法 | 第106-108页 |
| ·RNA的提取及cDNA合成 | 第107页 |
| ·MaSOD不同成员qRT-PCR特异引物的设计 | 第107-108页 |
| 3 结果与分析 | 第108-115页 |
| ·MaSOD基因不同成员qRT-PCR引物的特异性和扩增效率分析 | 第108页 |
| ·MaSOD基因家族各成员在不同组织部位的表达分析 | 第108-109页 |
| ·MaSOD基因不同成员在非生物胁迫下的表达分析 | 第109-112页 |
| ·MaSOD基因家族不同成员在低温胁迫下的表达模式 | 第109-110页 |
| ·MaSOD基因家族不同成员在高温胁迫下的表达模式 | 第110页 |
| ·MaSOD基因家族不同成员在干旱胁迫下的表达模式 | 第110-111页 |
| ·MaSOD基因家族不同成员在盐胁迫下的表达模式 | 第111-112页 |
| ·MaSOD基因家族不同成员在激素处理下的表达分析 | 第112-115页 |
| ·MaSOD基因家族不同成员在ABA处理下的表达模式 | 第112-113页 |
| ·MaSOD基因家族不同成员在GA_3处理下的表达模式 | 第113-114页 |
| ·MaSOD基因家族不同成员在IAA处理下的表达模式 | 第114页 |
| ·MaSOD基因家族不同成员在SA处理下的表达模式 | 第114-115页 |
| 4 讨论 | 第115-117页 |
| ·香蕉MaSOD家族不同成员对不同非生物胁迫的特异性响应 | 第115-116页 |
| ·香蕉MaSOD基因在激素处理下的差异表达 | 第116-117页 |
| 第六章 香蕉铜锌超氧化物歧化酶MaCSD1D基因的功能分析 | 第117-131页 |
| 1 材料与试剂 | 第117页 |
| ·材料 | 第117页 |
| ·试剂 | 第117页 |
| ·培养基 | 第117页 |
| 2 方法 | 第117-121页 |
| ·中间表达载体pCAMBIA1301SN的构建 | 第117-119页 |
| ·香蕉MaCSD1D基因过表达载体的构建 | 第119页 |
| ·重组质粒P1301-MaCSD1D转化农杆菌 | 第119页 |
| ·烟草无菌苗的培养及遗传转化 | 第119-120页 |
| ·转MaCSD1D基因烟草T0代植株的分子检测 | 第120页 |
| ·转MaCSD1D基因烟草的抗寒性分析 | 第120-121页 |
| 3 结果与分析 | 第121-129页 |
| ·香蕉MaCSD1D基因过表达植物载体的获得 | 第121-123页 |
| ·转MaCSD1D基因烟草T0代植株的获得及分子检测 | 第123页 |
| ·转MaCSD1D基因烟草种子在低温下的萌发 | 第123-126页 |
| ·转MaCSD1D基因烟草在低温胁迫下的表达分析 | 第126-129页 |
| ·转MaCSD1D基因烟草在低温胁迫下的酶活性分析 | 第129页 |
| 4 讨论 | 第129-131页 |
| 第七章 香蕉Cu/ZnSOD分子伴侣蛋白基因MaCCS的克隆与表达分析 | 第131-148页 |
| 1 材料与胁迫处理 | 第131-132页 |
| 2 方法 | 第132-135页 |
| ·香蕉核酸的提取与cDNA合成 | 第132页 |
| ·香蕉MaCCS基因PCR引物设计与克隆 | 第132-133页 |
| ·香蕉MaCCS基因的序列分析 | 第133-134页 |
| ·香蕉MaCCS基因的亚细胞定位 | 第134页 |
| ·香蕉MaCCS基因的实时荧光定量PCR | 第134-135页 |
| 3 结果与分析 | 第135-146页 |
| ·香蕉MaCCS基因开放阅读框的获得与分析 | 第135-139页 |
| ·香蕉MaCCS基因的基因结构与系统进化分析 | 第139页 |
| ·香蕉MaCCS基因的亚细胞定位分析 | 第139-141页 |
| ·香蕉MaCCS基因的转录起始位点与3’非编码区分析 | 第141-142页 |
| ·香蕉MaCCS基因启动子序列的克隆与顺式元件分析 | 第142-143页 |
| ·香蕉MaCCS基因的表达分析 | 第143-145页 |
| ·香蕉MaCCS基因与MaCSD家族基因间的相互关系 | 第145-146页 |
| 4 讨论 | 第146-148页 |
| ·香蕉中存在单个CCS基因和多种转录本 | 第146页 |
| ·香蕉MaCCS基因在不同组织部位的差异表达 | 第146-147页 |
| ·香蕉MaCCS基因参与非生物胁迫和激素应答 | 第147-148页 |
| 第八章 结论与展望 | 第148-152页 |
| 参考文献 | 第152-166页 |
| 附录1 香蕉SOD家族基因和CCS基因的cDNA序列信息 | 第166-176页 |
| 附录2 香蕉SOD家族基因和CCS基因的DNA序列信息 | 第176-193页 |
| 在学博士期间发表论文情况与参加学术会议情况 | 第193-194页 |
| 致谢 | 第194页 |
