摘要 | 第1-5页 |
Abstract | 第5-11页 |
1 综述 | 第11-20页 |
·多倍体植物研究概况 | 第11-13页 |
·多倍体植物的起源与进化 | 第11页 |
·多倍体植物的形成 | 第11-12页 |
·人工合成多倍体在多倍体研究中的应用 | 第12页 |
·多倍体基因表达研究 | 第12-13页 |
·减数分裂的研究进展 | 第13-16页 |
·减数分裂的重要性 | 第13页 |
·减数分裂的时期 | 第13-14页 |
·同源染色体的联会与配对 | 第14-16页 |
·多倍体减数分裂 | 第16页 |
·ZYP1研究进展 | 第16-18页 |
·ZYP1蛋白性质概述 | 第16-17页 |
·联会复合体的组成、功能及遗传控制 | 第17页 |
·ZYP1蛋白在联会、配对和重组中的作用 | 第17-18页 |
·研究目的与意义 | 第18-20页 |
2 ZYP1蛋白的原核表达、纯化及多克隆抗体的制备 | 第20-35页 |
·实验材料与仪器设备 | 第20-21页 |
·菌株、质粒和植株 | 第20页 |
·主要试剂 | 第20-21页 |
·主要仪器设备 | 第21页 |
·实验方法 | 第21-29页 |
·拟南芥RNA的提取与cDNA的获得 | 第21-22页 |
·目的片段克隆 | 第22-23页 |
·原核表达载体pET-28a(+)-ZYP1的构建 | 第23-25页 |
·重组质粒的酶切鉴定及阳性克隆株的测序 | 第25-26页 |
·pET-28a(+)-ZYP1融合蛋白的诱导表达 | 第26页 |
·目的蛋白诱导表达与检测 | 第26-28页 |
·ZYP1融合蛋白的纯化与检测 | 第28-29页 |
·拟南芥ZYP1蛋白多克隆抗体的制备及其特异性和效价测定 | 第29页 |
·结果与分析 | 第29-33页 |
·pET-28a(+)-ZYP1表达载体构建及鉴定 | 第29-30页 |
·ZYP1融合蛋白的表达与纯化 | 第30-32页 |
·抗血清特异性检测和效价测定 | 第32-33页 |
·讨论与结论 | 第33-35页 |
3 二倍体、同源四倍体白菜的细胞学观察 | 第35-40页 |
·实验材料与仪器设备 | 第35页 |
·实验方法 | 第35-36页 |
·减数分裂时期花蕾大小的确定 | 第35页 |
·细胞悬液制片观察法 | 第35-36页 |
·结果与分析 | 第36-38页 |
·减数分裂时期花蕾大小的确定 | 第36-37页 |
·制片方法的优化 | 第37页 |
·二倍体及同源四倍体白菜染色体构型的分析 | 第37-38页 |
·讨论与结论 | 第38-40页 |
4 ZYP1多克隆抗体在二倍体、同源四倍体拟南芥及白菜中的免疫定位 | 第40-44页 |
·实验材料 | 第40页 |
·实验方法 | 第40-41页 |
·结果与分析 | 第41-42页 |
·联会复合体蛋白ZYP1的荧光信号分析 | 第42页 |
·联会复合体蛋白ZYP1在二倍体及同源四倍体中表达量的比较 | 第42页 |
·讨论与结论 | 第42-44页 |
5 ZYP1基因在二倍体、同源四倍体拟南芥及白菜中表达水平的分析 | 第44-51页 |
·实验材料与仪器设备 | 第44页 |
·实验方法 | 第44-48页 |
·内参基因的选取及引物的设计 | 第44页 |
·二倍体、同源四倍体拟南芥及白菜总RNA的提取和反转录 | 第44-47页 |
·荧光定量PCR实验 | 第47-48页 |
·结果与分析 | 第48-49页 |
·RNA纯度和完整性 | 第48页 |
·ZYP1基因在二倍体、同源四倍体拟南芥及白菜中的表达水平分析 | 第48-49页 |
·讨论与结论 | 第49-51页 |
6 联会复合体蛋白ZYP1在二倍体、同源四倍体白菜中的Westernblot验证 | 第51-56页 |
·实验材料与仪器设备 | 第51页 |
·实验方法 | 第51-53页 |
·TCA-丙酮法提取总蛋白 | 第51-52页 |
·电泳待测样品的处理 | 第52页 |
·蛋白浓度的测定 | 第52-53页 |
·ZYP1蛋白在同源四倍体、二倍体白菜中的Western blot验证 | 第53页 |
·结果与分析 | 第53-54页 |
·TCA-丙酮法提取总蛋白 | 第53页 |
·二倍体及同源四倍体白菜全蛋白的电泳结果 | 第53-54页 |
·ZYP1蛋白在二倍体及同源四倍体白菜中的Western blot验证 | 第54页 |
·讨论与结论 | 第54-56页 |
7 结论与展望 | 第56-58页 |
参考文献 | 第58-63页 |
致谢 | 第63-64页 |
在学期间发表的学术论文 | 第64页 |