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活性氧和生长素参与拟南芥生长发育的研究

摘要第1-11页
Abstract第11-14页
本文缩略词表第14-16页
第一章 前言第16-46页
 1 拟南芥活性氧研究背景第16-29页
   ·植物中ROS的来源以及种类第16-17页
   ·植物中ROS的产生部位第17-19页
   ·植物中ROS的清除机制第19-23页
     ·ROS的酶促清除机制第19-20页
     ·ROS的非酶促清除机制第20-23页
   ·ROS的功能第23-29页
     ·ROS在信号转导中的作用第24-25页
       ·组氨酸激酶感受ROS信号第24页
       ·ROS激活促分裂活化蛋白激酶(MAPK)信号途径第24页
       ·ROS可以激活转录因子第24-25页
     ·ROS在植物生长发育和胁迫应答中的作用第25-29页
       ·ROS参与调控植物抗病防御过程第25-26页
       ·ROS参与调控气孔发育第26-27页
       ·ROS参与根的发育调控第27-28页
       ·ROS参与调控植物非生物胁迫反应第28-29页
 2 拟南芥生长素研究背景第29-39页
   ·生长素的合成第29-30页
   ·生长素的代谢第30-31页
   ·生长素的运输第31-33页
   ·生长素信号第33-35页
   ·生长素在植物发育过程中的作用第35-39页
     ·生长素对植物根发育的调控第35-37页
     ·生长素对植物胚胎形成的调控第37-38页
     ·生长素对植物叶片发育的调控第38-39页
 3 植物应对铜胁迫的研究背景第39-44页
   ·铜的吸收第40-41页
   ·铜转运蛋白的调控第41-42页
   ·Cu-microRNA介导的铜蛋白表达的调节第42-43页
   ·对过量铜的应答第43-44页
 4 本研究的目的和意义第44-46页
第二章 铜通过PIN1介导的生长素重分布调控主根的伸长第46-84页
 第一节 前言第46-48页
 第二节 材料与方法第48-55页
  1. 材料第48页
  2. 方法第48-55页
   ·拟南芥的种植第48-49页
     ·光照培养箱种植法第48页
     ·温室培养种植法第48-49页
   ·植物基因组的提取方法第49-50页
     ·十六烷基三甲基溴化铵(CTAB)提取法第49页
     ·Edwars Extraction Buffer提取基因组法第49-50页
   ·植物RNA提取的方法第50-51页
   ·RT-PCR反应-RNA逆转录合成cDNA第一链第51页
   ·定量分析PIN相关基因的表达第51-52页
   ·根长实验第52页
   ·GUS染色第52-53页
   ·根的显微观察及图像分析第53页
   ·ROS染色第53-54页
   ·拟南芥植株的杂交第54-55页
 第三节 结果和分析第55-79页
  1. 铜通过抑制分生区和伸长区来抑制主根的生长第55-59页
  2. 乙烯调节的信号并没有参与铜对主根伸长的抑制第59-61页
  3. 过量的铜能使生长素发生重分布第61-64页
  4. 铜诱导的生长素重分布是不依赖于PIN2或AUX1第64-69页
  5. 生长素运输载体PIN1参与了铜诱导的生长素重新分布的调控第69-73页
  6. 铜能够诱导H_2O_2的产生,但H_2O_2没有参与铜调节的生长素重分布第73-79页
 第四节 讨论第79-84页
第三章 过氧化氢和生长素网络调控关系的研究第84-103页
 第一节 前言第84-86页
 第二节 材料和方法第86-95页
  1 材料第86页
   ·植物材料第86页
   ·菌株第86页
   ·培养基第86页
   ·载体第86页
  2 方法第86-95页
   ·载体的构建第86-92页
   ·将构建好的载体转化到农杆菌感受态GV3101第92-93页
     ·GV3101感受态的制备第92页
     ·将构建好的载体转化农杆菌感受态GV3101第92-93页
   ·农杆菌转化拟南芥第93页
   ·转基因植株的筛选以及纯合体的获得第93-95页
 第三节 结果和分析第95-101页
  1. cat2具有叶片上卷的表现型是由过氧化氢含量升高引起的第95-97页
  2. cat2叶片上卷的表现型是由于其体内生长素浓度降低导致的第97-99页
  3. 外源提高生长素浓度可以恢复cat2叶卷表型第99页
  4. 内源提高生长素的含量也可以恢复cat2叶卷表型第99-101页
 第四节 讨论第101-103页
参考文献第103-116页
在读期间发表论文及投稿论文第116-117页
致谢第117页

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