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羟基红花黄色素A促进激素诱导兔骨髓基质细胞成骨分化及其MAPK信号转导机制的研究

中英文缩略词表第1-8页
中文摘要第8-12页
Abstract第12-16页
前言第16-19页
第一部分 羟基红花黄色素A促进激素诱导兔BMSCs成骨分化及其MAPK信号转导机制的在体实验第19-43页
 1. 目的第19页
 2. 引言第19-20页
 3. 实验材料第20-22页
   ·实验动物第20页
   ·实验药物第20页
   ·主要试剂第20-21页
   ·主要仪器第21页
   ·主要试剂的配制第21-22页
 4. 实验方法第22-31页
   ·分组与造模第22页
   ·模型鉴定第22页
   ·药物干预第22-23页
   ·取材第23页
   ·血液生化指标的检测第23页
   ·组织形态学的观察第23-24页
   ·RT-PCR检测股骨头组织Cbfα1、Collagen-Ⅰ mRNA的表达第24-28页
   ·Western Blotting检测股骨头组织p-ERK、p-JNK和p-P38蛋白的表达第28-31页
   ·数据统计分析第31页
 5. 结果第31-37页
   ·模型鉴定第31-32页
   ·血液生化指标检测第32-33页
   ·组织形态学的观察第33-34页
   ·RT-PCR检测各组Cbfα1、Collagen-Ⅰ mRNA表达第34-35页
   ·Western Blotting检测各组股骨头组织p-ERK、p-JNK和p-P38蛋白表达第35-37页
 6. 讨论第37-42页
   ·激素结合强迫立位诱导股骨头缺血坏死模型的建立及鉴定第37-38页
   ·红花提取物的药理作用第38-39页
   ·髓芯减压联合髓腔内注射HSYA治疗SANFH第39页
   ·HSYA干预激素诱导的缺血坏死股骨头形态结构的变化第39-40页
   ·HSYA对激素诱导的股骨头骨髓内BMSCs成脂成骨分化的影响第40-41页
   ·HSYA调控激素性股骨头缺血坏死MAPK信号转导通路的作用机制第41-42页
 7. 小结第42-43页
第二部分 羟基红花黄色素A促进激素诱导兔BMSCs成骨分化及其MAPK信号转导机制的离体实验第43-69页
 1. 目的第43页
 2. 引言第43-44页
 3. 实验材料第44-46页
   ·实验动物第44页
   ·实验药物第44页
   ·主要试剂第44-45页
   ·主要仪器第45页
   ·主要试剂的配制第45-46页
 4. 实验方法第46-56页
   ·BMSCs的离体培养第46-47页
   ·BMSCs的鉴定第47-48页
   ·梯度浓度地塞米松诱导BMSCs成脂分化第48页
   ·梯度浓度HSYA干预前后BMSCs的活性第48页
   ·实验分组与药物干预第48页
   ·油红“O”染色鉴定脂肪细胞第48-49页
   ·透射电子显微镜观察BMSCs的超微结构第49页
   ·BMSCs的甘油三酯检测第49页
   ·BMSCs的碱性磷酸酶检测第49-50页
   ·RT-PCR检测BMSCs内Cbfα1、Collagen-Ⅰ mRNA的表达第50-53页
   ·Western Blotting检测BMSCs内p-ERE、p-JNK和p-P38蛋白的表达第53-55页
   ·数据统计分析第55-56页
 5. 结果第56-64页
   ·离体培养BMSCs的形态观察第56-57页
   ·离体培养BMSCs的鉴定第57-58页
   ·梯度浓度法优化HSYA干预兔BMSCs活性的量效关系第58页
   ·油红“O”染色结果第58-59页
   ·透射电子显微镜观察干预后BMSCs的超微结构第59-60页
   ·BMSCs内碱性磷酸酶检测结果第60页
   ·BMSCs内甘油三酯检测结果第60-61页
   ·RT-PCR检测BMSCs内Cbfα1、Collagen-Ⅰ mRNA表达第61-62页
   ·Western Blotting检测BMSCs内p-ERE、p-JNK和p-P38蛋白的表达第62-64页
 6. 讨论第64-68页
   ·离体兔BMSCs培养的建立及鉴定第64-66页
   ·地塞米松对BMSCs成脂分化的诱导作用第66页
   ·HSYA对地塞米松诱导的BMSCs成脂和成骨分化的影响第66-67页
   ·HSYA调控地塞米松诱导的BMSCs MAPK信号转导通路的作用机制第67-68页
 7. 小结第68-69页
结论第69-70页
创新点及意义第70-71页
思考与展望第71-72页
参考文献第72-78页
致谢第78-79页
文献综述第79-85页
 参考文献第83-85页
作者简历第85-86页

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