| 摘要 | 第1-9页 |
| ABSTRACT | 第9-11页 |
| 第一部分 文献综述 | 第11-29页 |
| 第一章 植物抗逆机理及水稻TFⅢA型锌指蛋白抗逆性研究进展 | 第11-19页 |
| ·植物逆境概念 | 第11页 |
| ·植物适应逆境的方式 | 第11页 |
| ·植物在非生物逆境下的耐逆机理 | 第11-16页 |
| ·渗透调节 | 第12-13页 |
| ·植物激素在抗逆性中的作用 | 第13-15页 |
| ·活性氧清除酶系统在植物抗逆性中的作用 | 第15-16页 |
| ·水稻TFⅢA型锌指蛋白抗逆性研究进展 | 第16-19页 |
| ·TFⅢA型锌指蛋白的结构 | 第16页 |
| ·水稻中参与逆境胁迫的TFⅢA型锌指蛋白 | 第16-17页 |
| ·水稻TFⅢA型锌指蛋白抗逆研究的展望 | 第17-19页 |
| 第二章 代谢组学在植物研究中的应用 | 第19-25页 |
| ·代谢组学概念 | 第19页 |
| ·代谢组学研究技术 | 第19-21页 |
| ·气相色谱和质谱联用(GC-MS) | 第19-20页 |
| ·液相色谱和质谱联用(LC-MS) | 第20页 |
| ·核磁共振(NMR) | 第20页 |
| ·傅里叶变换红外光谱质谱联用(FTIR/MS) | 第20-21页 |
| ·其他分析技术 | 第21页 |
| ·代谢组学在植物中的应用 | 第21-23页 |
| ·指纹图谱分析 | 第21-22页 |
| ·检测植物代谢产物的变化 | 第22页 |
| ·代谢组学在植物鉴定和转基因植物鉴别中的应用 | 第22页 |
| ·代谢组对基因功能的研究 | 第22-23页 |
| ·代谢组学发展前景 | 第23-25页 |
| 第三章 萌动蛋白的研究进展 | 第25-29页 |
| ·Germin蛋白的结构特点及生化性质 | 第25-26页 |
| ·Germin蛋白的结构特点 | 第25页 |
| ·Germin蛋白的生化性质 | 第25-26页 |
| ·Germin蛋白的功能 | 第26-27页 |
| ·在植物发育过程中的作用 | 第26页 |
| ·在植物非生物胁迫中的作用 | 第26-27页 |
| ·在植物生物胁迫中的作用 | 第27页 |
| ·应用现状及展望 | 第27-29页 |
| 第二部分 研究报告 | 第29-69页 |
| 第四章 水稻TFⅢA型锌指蛋白ZFP252耐逆机理 | 第29-51页 |
| 1 实验材料及方法 | 第29-38页 |
| ·植物材料 | 第29页 |
| ·试剂及试剂盒 | 第29页 |
| ·菌株和质粒 | 第29页 |
| ·水稻幼苗总RNA的提取 | 第29-30页 |
| ·总RNA完整性检测 | 第30页 |
| ·cDNA第一链的合成 | 第30页 |
| ·转基因植株的RT-PCR检测 | 第30-31页 |
| ·Real-time PCR扩增条件 | 第31页 |
| ·目的片段回收 | 第31-32页 |
| ·连接反应 | 第32页 |
| ·连接产物的转化 | 第32页 |
| ·大肠杆菌质粒DNA提取 | 第32-33页 |
| ·酶切反应 | 第33页 |
| ·离体叶片失水率的测定 | 第33页 |
| ·光合速率测定 | 第33页 |
| ·水稻植株气孔的扫描电镜观察 | 第33-34页 |
| ·氧化酶(SOD、CAT)活性测定 | 第34页 |
| ·锌指蛋白ZFP252在酵母中的转录活性分析 | 第34-35页 |
| ·锌指蛋白ZFP252在水稻原生质体中的瞬时表达实验 | 第35-38页 |
| 2 结果与分析 | 第38-46页 |
| ·ZFP252基因表达的生物信息学分析 | 第38页 |
| ·T_3代转基因植株的阳性验证 | 第38页 |
| ·转基因ZFP252植株籽粒相关农艺性状的考察 | 第38-41页 |
| ·转基因植株光合作用速率的测定 | 第41-42页 |
| ·离体叶片的失水率与相对水分含量测定 | 第42页 |
| ·水稻气孔的扫描电镜观察 | 第42-43页 |
| ·锌指蛋白ZFP252的亚细胞定位 | 第43-44页 |
| ·锌指蛋白ZFP252在酵母中的转录激活活性分析 | 第44-46页 |
| ·锌指蛋白ZFP252在水稻原生质体中的转录活性分析 | 第46页 |
| ·转基因水稻植株对干旱胁迫诱导的活性氧清除能力分析 | 第46页 |
| 3 讨论 | 第46-51页 |
| 第五章 过量表达ZFP252转基因水稻的代谢组分析 | 第51-61页 |
| 1 材料与方法 | 第52-55页 |
| ·植物材料的培养 | 第52页 |
| ·仪器及试剂 | 第52页 |
| ·试验方法 | 第52-53页 |
| ·预实验部分 | 第53-54页 |
| ·正式实验部分 | 第54页 |
| ·差异代谢物的定性分析 | 第54-55页 |
| 2 实验结果 | 第55-58页 |
| ·数据处理 | 第55页 |
| ·实验组与对照组主成分分析(PCA) | 第55-56页 |
| ·实验组与对照组的偏最小二乘方-判别分析(PLS-DA) | 第56页 |
| ·实验组与对照组之间的差异性代谢物及其结构鉴定 | 第56-57页 |
| ·乙烯利处理野生型植株后ZFP252基因的表达 | 第57-58页 |
| 3 讨论 | 第58-61页 |
| 第六章 OsGLP1基因的克隆与表达分析 | 第61-69页 |
| 1 材料与方法 | 第61-64页 |
| ·植物材料 | 第61页 |
| ·试剂及试剂盒 | 第61-62页 |
| ·水稻幼苗总RNA的提取 | 第62页 |
| ·总RNA完整性检测 | 第62页 |
| ·cDNA第一链的合成 | 第62-63页 |
| ·Real-time PCR | 第63页 |
| ·RT-PCR组织表达 | 第63-64页 |
| ·OsGLP1的生物信息学分析 | 第64页 |
| 2 结果与分析 | 第64-68页 |
| ·OsGLP1的启动子区顺式作用元件分析 | 第64页 |
| ·OsGLP1基因的表达分析 | 第64-65页 |
| ·亚细胞定位的预测和共表达基因 | 第65-68页 |
| 3 讨论 | 第68-69页 |
| 全文结论 | 第69-71页 |
| 参考文献 | 第71-79页 |
| 致谢 | 第79页 |
