| 摘要 | 第1-8页 |
| ABSTRACT | 第8-11页 |
| 目录 | 第11-14页 |
| 图序 | 第14-16页 |
| 表序 | 第16-17页 |
| 符号说明 | 第17-19页 |
| 第一章 绪论 | 第19-51页 |
| ·CRACC与SLAM家族 | 第19-42页 |
| ·总述 | 第19-36页 |
| ·CRACC | 第36-39页 |
| ·SLAM | 第39页 |
| ·2B4/CD48 | 第39-40页 |
| ·NTB-A(人)/Ly108(鼠) | 第40-41页 |
| ·Ly9 | 第41页 |
| ·CD84 | 第41页 |
| ·BLAME & SF2001 | 第41页 |
| ·小结 | 第41-42页 |
| ·肝脏免疫损伤 | 第42-49页 |
| ·肝脏的免疫解剖学与免疫微环境 | 第42-43页 |
| ·肝脏的天然免疫 | 第43-46页 |
| ·肝脏天然免疫细胞与肝脏免疫损伤模型 | 第46-48页 |
| ·SLAM家族分子参与调节肝脏免疫 | 第48页 |
| ·小结 | 第48-49页 |
| ·纳米材料包被siRNA给药 | 第49-51页 |
| ·纳米材料给药技术 | 第49-50页 |
| ·纳米材料包被siRNA靶向枯否细胞给药 | 第50页 |
| ·小结 | 第50-51页 |
| 第二章 引言 | 第51-55页 |
| 第三章 材料方法 | 第55-67页 |
| ·实验材料 | 第55-59页 |
| ·小鼠 | 第55页 |
| ·细胞系 | 第55页 |
| ·抗体 | 第55-56页 |
| ·生物化学试剂 | 第56页 |
| ·纳米颗粒包被siRNA | 第56-57页 |
| ·RT-PCR及定量PCR试剂 | 第57页 |
| ·CRACC表达载体 | 第57页 |
| ·细胞培养材料 | 第57-58页 |
| ·谷丙转氨酶检测试剂 | 第58页 |
| ·ELISA检测试剂盒 | 第58页 |
| ·NK细胞MACS分选试剂盒 | 第58页 |
| ·仪器设备 | 第58-59页 |
| ·实验方法 | 第59-67页 |
| ·小鼠MNCs的分离 | 第59-60页 |
| ·小鼠肝脏NK细胞的分离纯化 | 第60-61页 |
| ·小鼠巨噬细胞的分离 | 第61-62页 |
| ·小鼠肝细胞分离 | 第62页 |
| ·细胞培养及质粒转染 | 第62-63页 |
| ·流式细胞术 | 第63页 |
| ·小鼠PIC或PIC/D-GalN刺激 | 第63页 |
| ·小鼠纳米颗粒包被siRNA给药与体外转染 | 第63页 |
| ·抗体阻断实验 | 第63页 |
| ·RT-PCR与荧光定量PCR | 第63-65页 |
| ·免疫荧光染色与激光共聚焦扫描显微镜成像 | 第65页 |
| ·病理切片和H&E染色 | 第65-66页 |
| ·小鼠血清谷丙转氨酶(ALT)检测 | 第66页 |
| ·细胞因子ELISA检测 | 第66页 |
| ·统计分析 | 第66-67页 |
| 第四章 实验结果 | 第67-85页 |
| ·CRACC在肝脏NK细胞上表达丰富 | 第67-69页 |
| ·PIC体内注射刺激可以显著提高肝脏NK细胞和枯否细胞上CRACC的表达 | 第69-76页 |
| ·PIC注射可以有效刺激肝脏枯否细胞细胞上CRACC表达上调 | 第70-71页 |
| ·PIC注射可以有效刺激肝脏NK细胞上CRACC表达上调 | 第71-73页 |
| ·在PIC/D-GalN模型中可以看到CRACC表达上调与肝脏损伤相关 | 第73-76页 |
| ·特异性干扰下调枯否细胞上CRACC表达可以显著减轻PIC/D-GalN所诱导肝脏急性损伤 | 第76-81页 |
| ·NK细胞和枯否细胞之间的通过CRACC相互识别促进NK细胞激活 | 第81-85页 |
| 第五章 讨论 | 第85-89页 |
| ·CRACC在不同器官的淋巴细胞上表达状态不同的意义 | 第85-86页 |
| ·CRACC在巨噬细胞上的表达与功能 | 第86-87页 |
| ·CRACC在病毒性肝炎与炎症中的功能探讨 | 第87页 |
| ·其他SLAM分子在肝脏免疫细胞间相互作用的功能探讨 | 第87-88页 |
| ·总结与展望 | 第88-89页 |
| 参考文献 | 第89-103页 |
| 致谢 | 第103-105页 |
| 攻读博士学位期间的主要研究成果 | 第105页 |
| 论文发表 | 第105页 |
| 会议论文 | 第105页 |
| 获得奖励 | 第105页 |
