摘要 | 第1-9页 |
Abstract | 第9-11页 |
1 前言 | 第11-23页 |
·HSPC117 蛋白概述 | 第11-13页 |
·HSPC117 基因结构特征 | 第11-12页 |
·HSPC117 蛋白生物学功能 | 第12-13页 |
·HSPC117 蛋白研究现状 | 第13页 |
·哺乳动物细胞的体外培养与细胞生长 | 第13-15页 |
·体外细胞培养方式与细胞类型 | 第13-14页 |
·细胞增殖 | 第14页 |
·细胞生长 | 第14-15页 |
·哺乳动物 DNA 甲基化研究概况 | 第15-17页 |
·DNA 甲基化 | 第15页 |
·哺乳动物 DNA 甲基化研究进展 | 第15-16页 |
·DNA 甲基化与生物机体关联 | 第16-17页 |
·DNA 甲基化转移酶抑制剂——5-氮杂-2’-脱氧胞苷 | 第17页 |
·哺乳动物组蛋白乙酰化研究概况 | 第17-19页 |
·组蛋白修饰 | 第17-18页 |
·哺乳动物组蛋白乙酰化研究进展 | 第18页 |
·组蛋白乙酰化与生物机体的关联 | 第18-19页 |
·组蛋白去乙酰化抑制剂——曲古抑菌素 A | 第19页 |
·基质金属蛋白酶(MMPs)及其组织金属蛋白酶抑制剂(TIMPs)与细胞迁移运动 | 第19-22页 |
·细胞迁移运动及其机制 | 第19-20页 |
·基质金属蛋白酶家族(MMPs)结构特征 | 第20-21页 |
·基质金属蛋白酶-2,-14(MMP-2,-14) | 第21页 |
·组织金属蛋白酶抑制因子-2(TIMP-2) | 第21-22页 |
·实验目的与意义 | 第22-23页 |
2 实验材料与方法 | 第23-36页 |
·实验材料 | 第23-25页 |
·实验细胞株 | 第23页 |
·实验试剂 | 第23页 |
·主要仪器设备 | 第23-24页 |
·主要药品的配制 | 第24-25页 |
·主要生物学软件 | 第25页 |
·实验相关生物信息学网站 | 第25页 |
·实验方法 | 第25-36页 |
·人 HSPC117 基因克隆与测序 | 第25-28页 |
·pEGFP-C1-HSPC117 重组质粒构建 | 第28-31页 |
·HSPC117 基因亚细胞定位 | 第31-32页 |
·HSPC117 基因过表达对 JEG-3 细胞中 MMP-2、MMP-14、TIMP-2 基因表达的影响 | 第32-34页 |
·细胞划痕法测定 HSPC117 基因过表达对细胞迁移的影响 | 第34页 |
·不同浓度 TSA 和 5-aza-CdR 单独用药对 JEG-3 细胞生长的影响 | 第34-35页 |
·Real-time PCR 检测 TSA 与 5-aza-CdR 单独及联合用药对 JEG-3 细胞中 HSPC117 基因表达的影响 | 第35-36页 |
3 结果与分析 | 第36-47页 |
·HSPC117 基因的 TA 克隆与亚细胞定位结果 | 第36-41页 |
·人 HSPC117 基因目的片段的 PCR 扩增结果 | 第36页 |
·目的 DNA 片段重组质粒双酶切鉴定结果 | 第36-37页 |
·目的 DNA 片段测序结果 | 第37-38页 |
·pMD18-T-HSPC117 质粒和 pEGFP-C1 质粒双酶切结果 | 第38页 |
·重组质粒菌液 PCR 鉴定结果 | 第38-39页 |
·瞬时转染重组质粒 24h 与 48h HSPC117 基因的定位结果 | 第39-41页 |
·过表达 HSPC117 基因的 JEG-3 细胞中 MMP-2 基因、MMP-14 基因及 TIMP-2 基因相对表达量变化 | 第41-42页 |
·过表达 HSPC117 基因对 JEG-3 细胞迁移速率的影响 | 第42-44页 |
·不同浓度 TSA 与 5-aza-CdR 对 JEG-3 细胞生长的影响结果 | 第44-45页 |
·TSA 及 5-aza-CdR 不同处理对 JEG-3 细胞中 HSPC117 基因表达的影响 | 第45-47页 |
4 讨论 | 第47-51页 |
·HSPC117 基因的亚细胞定位 | 第47页 |
·HSPC117 基因过表达对细胞粘附相关基因表达的影响 | 第47-48页 |
·HSPC117 基因过表达对细胞迁移的影响 | 第48-49页 |
·TSA 对 HSPC117 基因表达的影响 | 第49页 |
·5-aza-CdR 对 HSPC117 基因表达的影响 | 第49-51页 |
5 结论 | 第51-52页 |
参考文献 | 第52-59页 |
攻读硕士学位期间发表的学术论文 | 第59页 |