| 摘要 | 第1-7页 |
| Abstract | 第7-13页 |
| 第一章 绪论 | 第13-30页 |
| ·淹水胁迫对植物的影响 | 第13页 |
| ·淹水胁迫对水稻生长的影响 | 第13-16页 |
| ·生长状态 | 第13-14页 |
| ·水稻耐淹机理的相关研究进展 | 第14-16页 |
| ·植物激素在植物适应耐淹机制中的作用 | 第16-20页 |
| ·乙烯在植物适应耐淹机制中起主导作用 | 第16-17页 |
| ·乙烯合成过程中的关键酶 | 第17-18页 |
| ·乙烯合成中ACS基因和ACO基因表达的研究 | 第18-19页 |
| ·细胞分裂素合成过程中的关键酶 | 第19-20页 |
| ·ABA降解过程中的关键酶 | 第20页 |
| ·实时荧光定量PCR(Real-time quantitative PCR)技术 | 第20-24页 |
| ·实时荧光定量PCR技术原理 | 第21页 |
| ·实时荧光定量PCR中非特异性扩增与特异性扩增的检测 | 第21-23页 |
| ·定量方法 | 第23-24页 |
| ·实时荧光定量PCR技术的应用 | 第24页 |
| ·RNA干扰 | 第24-28页 |
| ·RNA干扰的作用机制 | 第25页 |
| ·siRNA研究进展 | 第25页 |
| ·常用制备siRNA的方法 | 第25-26页 |
| ·miRNA的研究进展 | 第26-27页 |
| ·siRNA与miRNA的区别 | 第27-28页 |
| ·本研究的目的与意义 | 第28-30页 |
| 第二章 材料与方法 | 第30-51页 |
| ·材料 | 第30-35页 |
| ·植物材料 | 第30页 |
| ·菌株 | 第30页 |
| ·载体 | 第30页 |
| ·试剂盒 | 第30页 |
| ·主要试剂 | 第30-31页 |
| ·溶液 | 第31-33页 |
| ·培养基 | 第33-34页 |
| ·实验仪器 | 第34-35页 |
| ·方法 | 第35-51页 |
| ·空气和淹水环境中水稻胚芽鞘的培养 | 第35页 |
| ·石蜡切片制作水稻胚芽鞘细胞结构 | 第35-37页 |
| ·水稻胚芽鞘总RNA提取至转录为cDNA过程 | 第37-39页 |
| ·RT-PCR检测不同培养条件下胚芽鞘中ACS基因家族,ACO基因家族,IPT基因家族,8’-羟化酶的表达差异 | 第39-41页 |
| ·实时荧光定量PCR检测不同培养条件下胚芽鞘中ACS-2,ACO-6,8’-羟化酶的相对表达差异 | 第41-42页 |
| ·RNAi载体图谱及构建流程 | 第42-43页 |
| ·感受态细胞DH-10β的制备 | 第43-44页 |
| ·乙烯合成关键酶基因,ABA降解关键酶基因的RNAi表达载体构建 | 第44-49页 |
| ·RNAi双元表达载体的构建 | 第49-51页 |
| 第三章 结果与分析 | 第51-73页 |
| ·黑暗条件下,持续淹水胁迫对胚芽鞘生长速度的影响 | 第51页 |
| ·持续淹水胁迫对胚芽鞘细胞结构的影响 | 第51-53页 |
| ·日本晴胚芽鞘总RNA提取 | 第53-54页 |
| ·RT-PCR检测不同培养条件下胚芽鞘中ACS基因家族,ACO基因家族,IPT基因家族,8’-羟化酶的表达差异 | 第54-61页 |
| ·实时荧光定量PCR检测不同培养条件下胚芽鞘中ACS-2,ACO-6,8’-羟化酶的相对表达差异 | 第61-64页 |
| ·PCR产物熔解曲线和扩增效率一致性分析 | 第61-63页 |
| ·基因相对表达差异的比较 | 第63-64页 |
| ·RNAi表达载体的构建 | 第64-71页 |
| ·PCR反扩 | 第64-66页 |
| ·RNAi中间载体质粒抽提 | 第66页 |
| ·质粒PCR检测 | 第66-67页 |
| ·MAGIC,构建RNAi表达载体 | 第67-71页 |
| ·含RNAi的双元表达载体的鉴定 | 第71-73页 |
| ·植物双元表达载体的PCR鉴定 | 第71页 |
| ·双酶切鉴定 | 第71-73页 |
| 第四章 讨论与展望 | 第73-75页 |
| 参考文献 | 第75-80页 |
| 致谢 | 第80页 |
