| 中文摘要 | 第1-9页 |
| 英文摘要 | 第9-12页 |
| 文献综述：低氧与大脑 | 第12-34页 |
| 1 低氧的类型 | 第12-13页 |
| ·以低氧的严重程度分类 | 第12-13页 |
| ·以低氧的持续时间分类 | 第13页 |
| 2 低氧对脑功能的影响 | 第13-14页 |
| 3 脑对低氧的适应 | 第14-17页 |
| ·急性低氧对脑的影响 | 第16页 |
| ·慢性低氧对脑的影响 | 第16-17页 |
| 4 低氧对脑影响的分子机制 | 第17-34页 |
| ·促红细胞生成素 | 第17-24页 |
| ·EPO 在脑组织中表达的证据 | 第17-18页 |
| ·EPO 和EPOR 在脑的分布 | 第18-19页 |
| ·脑EPO 的产生机制 | 第19页 |
| ·EPO 和EPOR 对脑的保护作用 | 第19-21页 |
| ·对神经细胞凋亡的抑制作用 | 第19-20页 |
| ·抗氧化作用 | 第20页 |
| ·维持脑血管结构和功能正常 | 第20-21页 |
| ·促进脑血管新生 | 第21页 |
| ·低氧环境下EPO 和EPOR 对脑的保护作用 | 第21-22页 |
| ·EPO 在脑中作用的分子机制 | 第22-23页 |
| ·EPO 在低氧训练中的表达 | 第23-24页 |
| ·EPO 与HIF-1 | 第24页 |
| ·低氧诱导因子 | 第24-29页 |
| ·HIF-1 的功能 | 第24-26页 |
| ·HIF-1 在低氧应答中的表达 | 第26页 |
| ·脑组织中HIF-1 在低氧应答中的表达 | 第26-27页 |
| ·HIF-1 的低氧适应 | 第27-28页 |
| ·HIF-1 在低氧训练中的表达 | 第28-29页 |
| ·血管内皮细胞生长因子 | 第29-32页 |
| ·VEGF 在血管中的作用 | 第30-31页 |
| ·增加血管通透性 | 第30页 |
| ·促进血管生成 | 第30-31页 |
| ·血管维持功能 | 第31页 |
| ·改善血流动力学功能 | 第31页 |
| ·对血管损伤后的修复 | 第31页 |
| ·对神经细胞的作用 | 第31-32页 |
| ·直接神经保护作用 | 第31页 |
| ·神经元生成作用 | 第31-32页 |
| ·葡萄糖载体蛋白 | 第32-34页 |
| 前言 | 第34-37页 |
| 1 选题依据 | 第34-36页 |
| 2 研究目标和内容 | 第36页 |
| 3 研究假设 | 第36-37页 |
| 第一部分 低氧训练动物模型的建立 | 第37-48页 |
| 1 实验材料和方法 | 第37-39页 |
| ·实验动物 | 第37页 |
| ·实验仪器设备 | 第37-39页 |
| 2 低氧训练模型的建立 | 第39-48页 |
| ·低氧训练方式的选择 | 第39-45页 |
| ·适应动物房 | 第44-45页 |
| ·适应跑台 | 第45页 |
| ·强度适应性训练 | 第45页 |
| ·耐力适应性训练 | 第45页 |
| ·力竭时间测试 | 第45页 |
| ·实验动物分组 | 第45-47页 |
| ·训练安排 | 第47-48页 |
| 第二部分 低氧训练对大鼠运动能力及机能的影响 | 第48-61页 |
| 1 实验材料和方法 | 第48-51页 |
| ·实验动物 | 第48页 |
| ·实验仪器及试剂 | 第48页 |
| ·测试指标和方法 | 第48-50页 |
| ·运动能力测试 | 第48-49页 |
| ·力竭时间测试 | 第49-50页 |
| ·统计学处理 | 第50-51页 |
| 2 实验结果 | 第51-58页 |
| 3 分析与讨论 | 第58-60页 |
| 4 小结 | 第60-61页 |
| 第三部分 低氧训练对大鼠海马神经元形态及细胞调亡的影响 | 第61-81页 |
| 1 实验材料和方法 | 第61-66页 |
| ·实验动物 | 第61页 |
| ·实验仪器及试剂 | 第61-62页 |
| ·实验取材 | 第62页 |
| ·实验方法 | 第62-65页 |
| ·统计学处理 | 第65-66页 |
| 2 实验结果 | 第66-74页 |
| ·低氧训练对大鼠海马神经元形态的影响 | 第66-67页 |
| ·低氧训练对大鼠海马神经元细胞调亡的影响 | 第67-74页 |
| 3 分析与讨论 | 第74-80页 |
| ·运动训练对海马神经元形态的影响 | 第75-76页 |
| ·低氧训练对海马神经元形态的影响 | 第76-77页 |
| ·训练和低氧训练对海马神经元调亡的影响 | 第77-80页 |
| 4 小结 | 第80-81页 |
| 第四部分 低氧训练对大鼠海马低氧诱导因子及其调控相关基因MRNA 表达的影响 | 第81-103页 |
| 1 实验材料和方法 | 第81-86页 |
| ·实验动物 | 第81页 |
| ·实验仪器及试剂 | 第81-82页 |
| ·实验取材 | 第82页 |
| ·实验方法 | 第82-85页 |
| ·统计学处理 | 第85-86页 |
| 2 实验结果 | 第86-92页 |
| ·低氧训练对大鼠海马组织中HIF-1αmRNA 表达的影响 | 第87-88页 |
| ·低氧训练对大鼠海马组织中EPO mRNA 表达的影响 | 第88-89页 |
| ·低氧训练对大鼠海马组织中EPOR mRNA 表达的影响 | 第89-90页 |
| ·低氧训练对大鼠海马组织中GLUT1 mRNA 表达的影响 | 第90-91页 |
| ·低氧训练对大鼠海马组织中VEGF mRNA 表达的影响 | 第91-92页 |
| 3 分析与讨论 | 第92-102页 |
| ·低氧训练对大鼠海马HIF-1αmRNA 表达的影响 | 第92-96页 |
| ·低氧训练对大鼠海马EPO 和EPOR mRNA 表达的影响 | 第96-98页 |
| ·低氧训练对大鼠海马VEGF mRNA 表达的影响 | 第98-100页 |
| ·低氧训练对大鼠海马GLUT1 mRNA 表达的影响 | 第100-102页 |
| 4 小结 | 第102-103页 |
| 全文讨论 | 第103-106页 |
| 1 低氧训练对海马神经元的影响 | 第103-104页 |
| 2 低氧训练对运动能力的影响 | 第104-105页 |
| 3 低氧训练方式 | 第105-106页 |
| 全文总结 | 第106-110页 |
| 1 结论 | 第106-107页 |
| 2 本文工作特色和创新之处 | 第107页 |
| 3 脑组织对低氧训练适应的可能机制 | 第107-109页 |
| 4 对低氧训练实践的提示 | 第109-110页 |
| 致谢 | 第110-111页 |
| 参考文献 | 第111-119页 |
