| 缩略词表 | 第1-6页 |
| 中文摘要 | 第6-9页 |
| 英文摘要 | 第9-13页 |
| 前言 | 第13-16页 |
| 材料与方法 | 第16-29页 |
| 一、 实验用试剂及配制 | 第16-19页 |
| (一) 实验用试剂 | 第16-17页 |
| (二) 溶液的配制 | 第17-19页 |
| 二、 实验器械和仪器 | 第19-20页 |
| 三、 电镜标本的制样及观察 | 第20-27页 |
| (一) 实验动物及标本的取材 | 第20-21页 |
| (二) 电刺激-超低温快速冷冻固定实时处理系统 | 第21-23页 |
| (三) 冷冻置换 | 第23-24页 |
| (四) 常规电镜制样及观察 | 第24页 |
| (五) 免疫电镜制样及观察 | 第24-27页 |
| 四、 电刺激-激光扫描共聚焦显微镜操作系统 | 第27-29页 |
| (一) 标本的取材及制样 | 第27页 |
| (二) 激光扫描共聚焦显微镜观察 | 第27-29页 |
| 结果 | 第29-43页 |
| 一、 骨骼肌冷冻固定后常规电镜制样的超微结构特点 | 第29-40页 |
| (一) 静息态骨骼肌冷冻固定后的超微结构特点 | 第29-31页 |
| (二) 电刺激后骨骼肌在兴奋收缩偶联过程中超微结构的实时变化 | 第31-40页 |
| 二、 免疫标记后骨骼肌的超微结构特点 | 第40-41页 |
| (一) 包埋前免疫胶体金标记 | 第40页 |
| (二) 包埋后免疫胶体金标记 | 第40-41页 |
| 三、 Ca2+ spark | 第41-43页 |
| 讨论 | 第43-50页 |
| 一、 刺激后骨骼肌收缩过程中实时超微结构形态变化和功能的关系 | 第43-48页 |
| (一) 肌膜、胞浆在钙诱导钙释放过程中实时超微结构变化和功能的关系 | 第43-44页 |
| (二) 肌节在收缩过程中实时超微结构变化和功能的关系 | 第44页 |
| (三) 三联体在收缩过程中实时超微结构变化和功能的关系 | 第44-48页 |
| 二、 对三联体部位钙离子通道免疫胶体金标记的探讨 | 第48页 |
| 三、 Ca~(2+) spark与CICR机制 | 第48-50页 |
| 小结 | 第50-53页 |
| 一、 未加Nifedipine的骨骼肌电刺激后的超微结构形态特征 | 第50-51页 |
| 二、 加Nifedipine的骨骼肌电刺激后的超微结构形态特征 | 第51页 |
| 三、 免疫标记后骨骼肌的超微结构特点 | 第51页 |
| 四、 Ca~(2+) spark与CICR机制 | 第51-53页 |
| 参考文献 | 第53-58页 |
| 综述 | 第58-65页 |
| 综述正文 | 第58-63页 |
| 综述参考文献 | 第63-65页 |
| 学习期间发表和拟发表的论文 | 第65-66页 |
| 致谢 | 第66页 |
