| 第一部分 文献综述 | 第1-19页 |
| 1 钙与信号转导 | 第9-10页 |
| 2 钙信号与受精的关系 | 第10-15页 |
| ·钙信号与动物受精的关系 | 第10-11页 |
| ·钙信号与植物双受精的关系 | 第11-15页 |
| ·钙与花粉萌发和花粉管生长 | 第11页 |
| ·雌性生殖单位 | 第11-12页 |
| ·钙在雌性生殖单位中的分布及作用 | 第12-15页 |
| 3 胞质游离钙的研究方法 | 第15-19页 |
| ·水母发光蛋白法(aequorin) | 第15页 |
| ·Cameleons | 第15-17页 |
| ·钙离子荧光探针法 | 第17-18页 |
| ·膜片钳 | 第18-19页 |
| 第二部分 论文研究工作 | 第19-37页 |
| 引言 | 第19页 |
| 第一章 植物受精过程中胚囊细胞的细胞学变化及外源钙对受精过程中细胞学事件的影响 | 第19-31页 |
| 1 实验材料和化学试剂与仪器 | 第19-20页 |
| ·实验材料 | 第19页 |
| ·化学试剂与仪器 | 第19-20页 |
| 2 实验方法 | 第20-21页 |
| ·活体检测不同时期胚囊各细胞的细胞壁 | 第20页 |
| ·胚囊的剥离 | 第20页 |
| ·C.W.M2R处理液及清洗液的配制 | 第20页 |
| ·C.W.M2R处理 | 第20页 |
| ·钙载体处理原生质体 | 第20-21页 |
| ·胚囊材料的剥离与酶解 | 第20-21页 |
| ·钙离子载体A23187处理液配制 | 第21页 |
| ·酶液的清洗及A23187处理 | 第21页 |
| ·C.W.M2R处理 | 第21页 |
| ·荧光镜检测 | 第21页 |
| 3 结果与分析 | 第21-28页 |
| ·不同发育时期完整胚囊内卵、助细胞及中央细胞细胞壁的状况 | 第21-24页 |
| ·雌性生殖单位细胞壁的荧光染色 | 第21-22页 |
| ·助细胞 | 第22页 |
| ·卵细胞 | 第22页 |
| ·中央细胞 | 第22-24页 |
| ·外源导入钙诱导胚囊细胞原生质体壁形成 | 第24-28页 |
| ·蓝猪耳胚囊原生质体制备 | 第24-26页 |
| ·钙处理卵细胞、中央细胞原生质体 | 第26-28页 |
| 4 讨论 | 第28-31页 |
| ·雌性生殖单位细胞壁在受精前后的变化 | 第28-29页 |
| ·关于雌性生殖单位细胞壁的染色方法 | 第28页 |
| ·雌性生殖单位细胞壁 | 第28-29页 |
| ·原生质体分离 | 第29-30页 |
| ·关于受精前后卵细胞、中央细胞壁以及钙对其发育的作用 | 第30-31页 |
| 第二章 转Yc2.1基因蓝猪耳植株的构建 | 第31-37页 |
| 1 化学试剂 | 第31页 |
| 2 实验方法 | 第31-35页 |
| ·培养基的配制 | 第31-32页 |
| ·扩增带有Yc2.1基因的质粒 | 第32页 |
| ·质粒的提取和鉴定 | 第32-33页 |
| ·农杆菌感受态的制备及转化 | 第33页 |
| ·农杆菌感受态的制备及转化 | 第33-34页 |
| ·阳性农杆菌的鉴定 | 第34页 |
| ·工程菌菌液的制备及蓝猪耳转化 | 第34-35页 |
| ·阳性苗提取DNA进行PCR鉴定 | 第35页 |
| ·Confocal检测 | 第35页 |
| 3 初步结果 | 第35-37页 |
| 第三部分 结论与展望 | 第37-38页 |
| 参考文献 | 第38-47页 |
| 致谢 | 第47-48页 |
| 个人简历 | 第48页 |
