| 摘要 | 第1-12页 |
| Abstract | 第12-16页 |
| 第一章 文献综述 | 第16-32页 |
| ·黄萎病菌研究进展 | 第16-17页 |
| ·种的分类 | 第16页 |
| ·生理型划分 | 第16-17页 |
| ·棉花黄萎病适宜环境 | 第17页 |
| ·黄萎病致病机理 | 第17-19页 |
| ·导管堵塞说 | 第17-18页 |
| ·毒素说 | 第18-19页 |
| ·棉花抗黄萎病机理 | 第19-21页 |
| ·组织结构抗性 | 第20页 |
| ·生理生化抗性 | 第20-21页 |
| ·植物蛋白质组学研究进展 | 第21-27页 |
| ·蛋白质组学研究技术 | 第21-25页 |
| ·植物亚细胞蛋白质组 | 第25-27页 |
| ·蛋白质组学在植物与病原菌相互作用研究中的应用 | 第27页 |
| ·植物转录组学研究进展 | 第27-32页 |
| ·转录组研究技术 | 第28-29页 |
| ·转录组学在植物与病原菌相互作用研究中的应用 | 第29-32页 |
| 第二章 引言 | 第32-34页 |
| ·论文立题依据 | 第32-33页 |
| ·论文技术路线 | 第33-34页 |
| 第三章 棉花蛋白质双向电泳技术体系的建立 | 第34-56页 |
| ·实验材料 | 第34-36页 |
| ·植物材料 | 第34页 |
| ·生化试剂 | 第34页 |
| ·仪器设备 | 第34-35页 |
| ·相关试剂与缓冲液配方 | 第35-36页 |
| ·实验方法 | 第36-43页 |
| ·蛋白质的提取 | 第36-39页 |
| ·蛋白质定量与SDS-PAGE电泳 | 第39页 |
| ·蛋白质双向电泳 | 第39-40页 |
| ·凝胶染色及图像采集分析 | 第40-41页 |
| ·蛋白质质谱分析与检索 | 第41页 |
| ·V.dahliae培养与棉花接菌 | 第41-42页 |
| ·RNA反转录方法 | 第42页 |
| ·Realtime-PCR方法 | 第42-43页 |
| ·结果与分析 | 第43-53页 |
| ·蛋白提取方法比较 | 第43-45页 |
| ·双向电泳 | 第45-47页 |
| ·Method D基础上的优化 | 第47-49页 |
| ·V.dahliae侵染后棉花叶片的差异蛋白质组学初步研究 | 第49-51页 |
| ·黄萎病与伤处理诱导原花色素通路相关基因的表达 | 第51-53页 |
| ·讨论 | 第53-54页 |
| ·棉花总蛋白的双向电泳 | 第53-54页 |
| ·V.dahliae侵染后,棉花叶片的差异蛋白质组学研究 | 第54页 |
| ·小结 | 第54-56页 |
| 第四章 V.dahliae侵染后棉花根差异蛋白质组学研究 | 第56-74页 |
| ·实验材料 | 第56-57页 |
| ·材料 | 第56页 |
| ·生化试剂 | 第56页 |
| ·仪器设备 | 第56页 |
| ·相关试剂与缓冲液配方 | 第56-57页 |
| ·实验方法 | 第57-59页 |
| ·V.dahliae接菌 | 第57页 |
| ·蛋白质提取 | 第57-58页 |
| ·蛋白质样品溶解与定量 | 第58页 |
| ·双向电泳与凝胶染色 | 第58页 |
| ·图像采集与分析 | 第58页 |
| ·蛋白质质谱分析与检索 | 第58页 |
| ·棉花根部活性氧检测 | 第58页 |
| ·棉花组织死亡细胞检测 | 第58页 |
| ·毒素及抑制剂处理 | 第58-59页 |
| ·结果与分析 | 第59-72页 |
| ·有效可靠的棉花接菌方法 | 第59-60页 |
| ·棉花根部组织材料的双向电泳 | 第60-62页 |
| ·V.dahliae侵染条件下,棉花根部组织差异蛋白质组学 | 第62-67页 |
| ·上调表达蛋白 | 第65页 |
| ·临时上调表达蛋白 | 第65-66页 |
| ·下调表达蛋白 | 第66-67页 |
| ·V.dahliae侵染后,棉花微管组织组织中活性氧的积累与细胞坏死 | 第67-69页 |
| ·活性氧不是导致细胞坏死的原因 | 第69页 |
| ·V.dahliae毒素诱导的植物细胞死亡需要启动植物新蛋白质的合成,并且是年龄依赖性的 #544.4 讨论 | 第69-72页 |
| ·讨论 | 第72页 |
| ·V.dahliae侵染后,棉花根部的差异蛋白质组学 | 第72页 |
| ·V.dahliae上清毒素的致病及抑制实验 | 第72页 |
| ·小结 | 第72-74页 |
| 第五章 弱致病V.dahliae侵染后,棉花根表达谱分析 | 第74-93页 |
| ·实验材料 | 第74-75页 |
| ·材料 | 第74页 |
| ·生化试剂 | 第74页 |
| ·相关试剂与缓冲液配方 | 第74-75页 |
| ·实验方法 | 第75-79页 |
| ·棉花基因组DNA的提取方法 | 第75-76页 |
| ·平衡酚(pH 5.5)与RNA提取缓冲液配制 | 第76页 |
| ·RNA提取步骤 | 第76-77页 |
| ·改进的试剂盒方法来提取RNA | 第77页 |
| ·表达谱分析 | 第77-78页 |
| ·RNA反转录方法 | 第78页 |
| ·Realtime-PCR方法 | 第78-79页 |
| ·Realtime-PCR数据处理 | 第79页 |
| ·结果与分析 | 第79-91页 |
| ·弱致病型V.dahliae侵染导致棉花幼苗矮小 | 第79-80页 |
| ·RNA提取方法的建立 | 第80-83页 |
| ·V.dahliae侵染后,棉花根Solexa表达谱分析结果 | 第83-88页 |
| ·上调表达通路 | 第88-91页 |
| ·下调表达通路 | 第91页 |
| ·讨论 | 第91-92页 |
| ·真菌孢子可能在致病中发挥作用 | 第91页 |
| ·Solexa结果 | 第91-92页 |
| ·Steroid合成通路基因参与棉花侧根生长 | 第92页 |
| ·小结 | 第92-93页 |
| 第六章 结论 | 第93-96页 |
| ·主要结论 | 第93-94页 |
| ·棉花双向电泳技术建立 | 第93页 |
| ·棉花根差异蛋白质组学研究 | 第93-94页 |
| ·弱致病V.dahliae侵染棉花后,棉花根部组织差异表达基因 | 第94页 |
| ·论文的创新 | 第94-96页 |
| ·建立棉花研究的蛋白质组及表达谱实验体系 | 第94-95页 |
| ·黄萎病菌胞外毒素通过主动调控植物的蛋白合成导致植物坏死 | 第95页 |
| ·黄萎病菌弱致病株不会导致棉花萎焉的一个重要原因是与甾族化合物代谢调控密切相关 | 第95-96页 |
| 参考文献 | 第96-113页 |
| 附录1 缩略词表 | 第113-115页 |
| 附录2 学习期间主持、参加的主要项目和发表的文章 | 第115-116页 |
| 附录3 根差异蛋白质质谱图 | 第116-124页 |
| 致谢 | 第124页 |
