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p38α对人血管内皮细胞一氧化氮合酶基因启动子转录活性的调节

中文摘要第1-6页
英文摘要第6-8页
目录第8-11页
前言第11-19页
 研究背景第11-19页
  1 人eNOS基因的作用第11-12页
  2 人eNOS基因表达的信号调控机制第12-13页
  3 MAPK信号通路在人eNOS基因表达中的作用第13-17页
  4 研究目的及意义第17-18页
  5 实验设计思路与技术路线第18-19页
材料与方法第19-37页
 1 细胞株、细菌和质粒第19页
 2 主要试剂与试剂盒第19-20页
 3 siRNA序列第20页
 4 常用试剂与配方第20-26页
   ·TAE电泳缓冲液(50×)第20-21页
   ·LB液体培养基第21页
   ·Ampicilin溶液(100 mg/mL)第21页
   ·LB平板第21-22页
   ·CaCl2溶液(0.05 mol/L)第22页
   ·Solution Ⅰ第22页
   ·Solution Ⅱ第22页
   ·Solution Ⅲ第22页
   ·0.25%胰酶细胞消化液第22-23页
   ·磷酸盐缓冲液(PBS)溶液成份第23页
   ·DMEM培养基第23页
   ·电泳缓冲液(10×)第23页
   ·转膜缓冲液第23-24页
   ·10%十二烷基硫酸钠SDS溶液第24页
   ·1.5mmol/LTris-HCL(pH 8.8)第24页
   ·0.5mmol/LTris-HCL(pH 6.8)第24页
   ·TBS缓冲液(tris bufferd saline,TBS 10×)第24页
   ·TBST缓冲液第24页
   ·12%分离胶第24-25页
   ·5%浓缩胶第25页
   ·考马斯亮兰染色液第25页
   ·脱色液第25-26页
 5 仪器设备第26-27页
 6 质粒提取第27-30页
   ·氯化钙法制备感受态细胞第27页
   ·转化大肠杆菌第27页
   ·挑单菌落第27-28页
   ·质粒抽提第28-29页
   ·电泳鉴定第29-30页
   ·浓度测定第30页
 7 优化转染效率第30-31页
   ·HUVEC-12细胞培养及处理方法第30页
   ·荧光蛋白载体pDsRedl-1的表达分析第30-31页
 8 建立双荧光报告系统第31-32页
   ·细胞转染第31页
   ·双荧光报告系统检测各组细胞裂解液的荧光强度第31-32页
 9 抑制剂SB203580对eNOS基因启动子活性的影响第32-34页
   ·Western Blot分析磷酸化p38蛋白和非磷酸化p38蛋白的表达第32-34页
   ·双荧光报告系统检测各组细胞裂解液的荧光强度第34页
 10 siRNA干扰p38α后eNOS基因启动子活性的变化第34-36页
   ·Western Blot检测不同浓度siRNA作用后p38蛋白的表达第34-35页
   ·Western Blot检测siRNA作用不同时间后p38蛋白的表达第35页
   ·Western Blot检测siRNA最佳浓度与时间点作用后p38蛋白的表达第35页
   ·双荧光报告系统检测siRNA最佳浓度与时间点下各组细胞裂解液的荧光强度第35-36页
 11 统计学处理第36-37页
结果第37-46页
 1 质粒的电泳鉴定第37-38页
 2 转染试剂用量的优化第38页
 3 p38α对人血管内皮细胞eNOS基因启动子活性的影响第38-39页
 4 抑制剂SB203580对磷酸化p38蛋白和非磷酸化p38蛋白的影响第39-40页
 5 抑制剂SB203580对eNOS基因启动子活性的影响第40-41页
 6 不同浓度siRNA对p38蛋白表达的影响第41-42页
 7 不同时间siRNA对p38蛋白表达的影响第42-43页
 8 最适浓度与时间点siRNA对p38蛋白表达的影响第43-44页
 9 siRNA对eNOS基因启动子活性的影响第44-46页
讨论第46-50页
小结与展望第50-52页
参考文献第52-56页
在学期间发表论文第56-57页
致谢第57-58页
英文缩略词表第58页

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