| 摘要 | 第5-6页 |
| abstract | 第6-7页 |
| 英汉缩略词对照表 | 第12-13页 |
| 绪论 | 第13-15页 |
| 第一章 c-kit+CD45-干细胞的分离培养及多能性检测 | 第15-36页 |
| 1.1 研究背景 | 第15-16页 |
| 1.2 材料与方法 | 第16-29页 |
| 1.2.1 材料 | 第16-21页 |
| 1.2.1.1 实验动物 | 第16页 |
| 1.2.1.2 主要试剂 | 第16-18页 |
| 1.2.1.3 主要仪器设备 | 第18-19页 |
| 1.2.1.4 主要液体制备 | 第19-21页 |
| 1.2.2 方法 | 第21-29页 |
| 1.2.2.1 C57BL/6成年小鼠心脏灌注酶解成单个细胞 | 第21-22页 |
| 1.2.2.2 小鼠心脏c-kit+CD45-干细胞的分离与提纯 | 第22-23页 |
| 1.2.2.3 c-kit+CD45-干细胞的培养 | 第23-24页 |
| 1.2.2.4 流式细胞分析干细胞纯度 | 第24页 |
| 1.2.2.5 免疫荧光染色鉴定干细胞表型 | 第24-25页 |
| 1.2.2.6 心脏干细胞球的形成 | 第25页 |
| 1.2.2.7 心脏干细胞球诱导分化 | 第25页 |
| 1.2.2.8 细胞总RNA提取(试剂盒法) | 第25-26页 |
| 1.2.2.9 逆转录 | 第26-27页 |
| 1.2.2.10 聚合酶链式反应技术(PCR) | 第27页 |
| 1.2.2.11 琼脂糖凝胶电泳显像 | 第27-28页 |
| 1.2.2.12 心脏干细胞分化免疫荧光染色 | 第28-29页 |
| 1.2.2.13 统计学处理 | 第29页 |
| 1.3 结果 | 第29-33页 |
| 1.3.1 c-kit+CD45-心脏干细胞纯度和表型 | 第29-30页 |
| 1.3.2 心脏干细胞球形成 | 第30-31页 |
| 1.3.3 心脏干细胞诱导分化 | 第31-33页 |
| 1.4 讨论 | 第33-36页 |
| 第二章 低氧条件下不同浓度依达拉奉对CSCs的保护作用 | 第36-54页 |
| 2.1 研究背景 | 第36-37页 |
| 2.2 材料与方法 | 第37-47页 |
| 2.2.1 材料 | 第37-40页 |
| 2.2.1.1 实验动物 | 第37页 |
| 2.2.1.2 主要试剂 | 第37-39页 |
| 2.2.1.3 主要仪器设备 | 第39-40页 |
| 2.2.1.4 主要培养基制备 | 第40页 |
| 2.2.2 方法 | 第40-47页 |
| 2.2.2.1 C57BL/6成年小鼠心脏灌注酶解成单个细胞 | 第40-41页 |
| 2.2.2.2 小鼠c-kit+CD45-CSCs的分离与提纯 | 第41-42页 |
| 2.2.2.3 CSCs的培养、传代 | 第42页 |
| 2.2.2.4 检测ROS的生成 | 第42-43页 |
| 2.2.2.5 流式细胞仪检测CSCs的凋亡率 | 第43-44页 |
| 2.2.2.6 迁移能力的检测 | 第44页 |
| 2.2.2.7 细胞总RNA的提取 | 第44-45页 |
| 2.2.2.8 反转录 | 第45-46页 |
| 2.2.2.9 聚合酶链式反应技术(PCR) | 第46页 |
| 2.2.2.10 琼脂糖凝胶电泳显像 | 第46-47页 |
| 2.2.2.11 统计学处理 | 第47页 |
| 2.3 结果 | 第47-53页 |
| 2.3.1 不同浓度依达拉奉对CSCs的ROS生成的影响 | 第47-49页 |
| 2.3.2 不同浓度依达拉奉对CSCs的凋亡率的影响 | 第49-50页 |
| 2.3.3 不同浓度依达拉奉对CSCs迁移能力的影响 | 第50-51页 |
| 2.3.4 不同浓度依达拉奉对低氧条件下CSCsbFGFmRNA的影响 | 第51-53页 |
| 2.4 讨论 | 第53-54页 |
| 结论 | 第54-55页 |
| 参考文献 | 第55-61页 |
| 致谢 | 第61-63页 |
| 攻读硕士学位期间发表的论文或专利 | 第63页 |
