| 中文摘要 | 第4-6页 |
| Abstract | 第6-7页 |
| 缩略语/符号说明 | 第10-12页 |
| 前言 | 第12-16页 |
| 研究现状、成果 | 第12-15页 |
| 研究目的、方法 | 第15-16页 |
| 一、依鲁替尼诱导DLBCL细胞凋亡的机制 | 第16-28页 |
| 1.1 对象、方法 | 第16-17页 |
| 1.1.1 细胞系 | 第16页 |
| 1.1.2 主要实验试剂 | 第16页 |
| 1.1.3 主要实验仪器 | 第16-17页 |
| 1.1.4 主要试剂配制 | 第17页 |
| 1.2 实验方法 | 第17-20页 |
| 1.2.1 细胞复苏、培养、传代与冻存 | 第17-18页 |
| 1.2.2 CD-19免疫磁珠阳性分选患者原代细胞 | 第18页 |
| 1.2.3 细胞抑制率、凋亡细胞测定和细胞核形态改变 | 第18-19页 |
| 1.2.4 Western blot法检测BCL-2、caspase-3、BTK等蛋白的表达 | 第19-20页 |
| 1.2.5 统计学方法 | 第20页 |
| 1.3 结果 | 第20-23页 |
| 1.3.1 依鲁替尼通过阻断BTK、AKT、ERK的活化和BCL-2蛋白家族家族等抗凋亡蛋白的表达对DLBCL细胞发挥细胞毒性作用 | 第20-23页 |
| 1.4 讨论 | 第23-27页 |
| 1.4.1 BCR复合物与DLBCL | 第23-25页 |
| 1.4.2 细胞凋亡与依鲁替尼 | 第25-27页 |
| 1.5 小结 | 第27-28页 |
| 二、依鲁替尼克服MSC介导的DLBCL细胞耐药的机制 | 第28-45页 |
| 2.1 对象、方法 | 第28-29页 |
| 2.1.1 细胞系 | 第28页 |
| 2.1.2 主要实验试剂 | 第28页 |
| 2.1.3 主要实验仪器 | 第28-29页 |
| 2.1.4 主要试剂配制 | 第29页 |
| 2.2 实验方法 | 第29-34页 |
| 2.2.1 细胞复苏、培养、传代与冻存 | 第29页 |
| 2.2.2 骨髓中MSC的分离培养 | 第29-30页 |
| 2.2.3 细胞趋化和粘附实验 | 第30-31页 |
| 2.2.4 酶联免疫吸附试验(ELISA)检测MSC的CXCL-12分泌情况 | 第31-32页 |
| 2.2.5 流式细胞术分析DLBCL细胞的CXCR4蛋白表达情况 | 第32页 |
| 2.2.6 病毒转染形成CXCR4过表达后检测DLBCL细胞的耐药情况 | 第32-33页 |
| 2.2.7 体外克隆形成实验 | 第33页 |
| 2.2.8 体内实验 | 第33-34页 |
| 2.2.9 统计学方法 | 第34页 |
| 2.3 结果 | 第34-39页 |
| 2.3.1 依鲁替尼抑制MSC与DLBCL细胞间趋化和粘附 | 第34页 |
| 2.3.2 依鲁替尼抑制MSC分泌CXCL-12和DLBCL细胞表达CXCR-4 | 第34-35页 |
| 2.3.3 依鲁替尼通过抑制CXCR-4的表达克服DLBCL细胞的耐药 | 第35页 |
| 2.3.4 依鲁替尼抑制DLBCL细胞的体外克隆形成和体内增殖生长 | 第35-39页 |
| 2.4 讨论 | 第39-44页 |
| 2.4.1 肿瘤微环境与恶性肿瘤 | 第39-42页 |
| 2.4.2 肿瘤微环境介导的细胞耐药(EMDR)与BCR复合物 | 第42-44页 |
| 2.5 小结 | 第44-45页 |
| 结论 | 第45-46页 |
| 参考文献 | 第46-57页 |
| 发表论文和参加科研情况说明 | 第57-58页 |
| 综述 依鲁替尼在B细胞非霍奇金淋巴瘤中的治疗作用 | 第58-69页 |
| 综述参考文献 | 第65-69页 |
| 致谢 | 第69-71页 |
| 个人简历 | 第71页 |
