| 缩写词 | 第7-8页 |
| 摘要 | 第8-10页 |
| Abstraction | 第10-11页 |
| 第一章 综述 | 第12-35页 |
| 1 引言 | 第12-13页 |
| 2 过氧化损伤导致神经退行性疾病的细胞凋亡机制 | 第13-14页 |
| 2.1 酶活性途径 | 第13页 |
| 2.2 自由基途径 | 第13页 |
| 2.3 发育途径 | 第13-14页 |
| 2.4 线粒体途径 | 第14页 |
| 3 PC12细胞生物活性 | 第14页 |
| 4 多糖的研究 | 第14-20页 |
| 4.1 多糖的分类 | 第14-15页 |
| 4.2 多糖的生物活性 | 第15-18页 |
| 4.3 多糖抗氧化的研究现状 | 第18-20页 |
| 5 锁阳的研究现状 | 第20-23页 |
| 5.1 锁阳的药理作用 | 第21-22页 |
| 5.2 锁阳多糖的研究进展 | 第22-23页 |
| 6 本研究的思路、目的和意义 | 第23-24页 |
| 7 研究目标 | 第24页 |
| 8 参考文献 | 第24-35页 |
| 第二章 H_2O_2诱导PC12细胞氧化损伤模型的建立 | 第35-59页 |
| 1 前言 | 第35页 |
| 2 实验材料 | 第35-37页 |
| 2.1 实验仪器 | 第35-36页 |
| 2.2 实验材料 | 第36-37页 |
| 2.3 主要试剂配制 | 第37页 |
| 3 实验方法 | 第37-43页 |
| 3.1 细胞培养 | 第37页 |
| 3.2 H_2O_2诱导PC12细胞凋亡浓度和时间的确定 | 第37-38页 |
| 3.3 Hoechst33258染色法观察PC12细胞核型的变化 | 第38页 |
| 3.4 碘化丙啶(PI)染色流式检测H_2O_2诱导PC12细胞周期的影响 | 第38-39页 |
| 3.5 AnnexinV-FITC/PI双染流式细胞仪检测PC12细胞凋亡率 | 第39-40页 |
| 3.6 LDH释放量的检测 | 第40页 |
| 3.7 胞内ROS(reactiveoxygenspecies,ROS)检测 | 第40页 |
| 3.8 线粒体膜电位的检测 | 第40-41页 |
| 3.9 细胞内钙离子的测定 | 第41页 |
| 3.10 Caspase-3酶活性的检测 | 第41页 |
| 3.11 Caspase-9酶活性的检测 | 第41-42页 |
| 3.12 细胞内SOD、GSH-Px酶活性和细胞外MDA水平检测 | 第42页 |
| 3.13 8-羟基脱氧鸟苷(8-OHdG)含量的检测 | 第42页 |
| 3.14 统计学处理 | 第42-43页 |
| 4 结果与分析 | 第43-53页 |
| 4.1 H_2O_2对PC12细胞活率的影响 | 第43-44页 |
| 4.2 Hoechst33258染色法分析H_2O_2对PC12细胞凋亡形态的影响 | 第44页 |
| 4.3 PI染色分析H_2O_2对PC12细胞周期的影响 | 第44-46页 |
| 4.4 AnnexinV-FITC／PI双染检测细胞凋亡 | 第46-47页 |
| 4.5 H_2O_2导致的胞内ROS水平升高 | 第47-48页 |
| 4.6 H_2O_2致PC12细胞外LDH漏出率增加 | 第48-49页 |
| 4.7 H_2O_2对PC12细胞线粒体膜电位的影响 | 第49-50页 |
| 4.8 H_2O_2诱导PC12细胞内钙离子浓度的升高 | 第50-51页 |
| 4.9 H_2O_2对PC12细胞Caspase-3、Caspase-9酶活性的影响 | 第51-52页 |
| 4.10 H_2O_2对PC12细胞内SOD、GSH-Px酶活性和细胞外MDA水平的影响 | 第52页 |
| 4.11 H_2O_2对PC12细胞8-OHdG的影响 | 第52-53页 |
| 5 讨论 | 第53页 |
| 6 小结 | 第53-54页 |
| 7 参考文献 | 第54-59页 |
| 第三章 锁阳多糖对H_2O_2诱导细胞氧化损伤的影响极其机制研究 | 第59-86页 |
| 1 前言 | 第59-60页 |
| 2 实验材料 | 第60-62页 |
| 2.1 实验仪器 | 第60页 |
| 2.2 实验材料 | 第60-61页 |
| 2.3 主要试剂配制 | 第61-62页 |
| 3 实验方法 | 第62-68页 |
| 3.1 细胞培养 | 第62页 |
| 3.2 确定锁阳多糖给药剂量 | 第62页 |
| 3.3 实验分组 | 第62-63页 |
| 3.4 PC12细胞增殖活性的检测 | 第63页 |
| 3.5 Hoechst33258染色法观察PC12细胞凋亡 | 第63-64页 |
| 3.6 碘化丙啶染色流式检测CSP对H_2O_2诱导PC12细胞周期的影响 | 第64页 |
| 3.7 AnnexinV-FITC／PI荧光染色,流式细胞仪检测凋亡 | 第64-65页 |
| 3.8 8-羟基脱氧鸟苷(8-OHdG)含量的检测 | 第65页 |
| 3.9 LDH释放量的检测 | 第65-66页 |
| 3.10 胞内ROS(reactiveoxygenspecies,ROS)检测 | 第66页 |
| 3.11 线粒体膜电位的检测 | 第66页 |
| 3.12 细胞内钙离子浓度测定 | 第66-67页 |
| 3.13 Caspase-3酶活性的检测 | 第67页 |
| 3.14 Caspase-9酶活性的检测 | 第67页 |
| 3.15 细胞内SOD、GSH-Px酶活性和细胞外MDA水平检测 | 第67-68页 |
| 3.16 统计学处理 | 第68页 |
| 4 结果与分析 | 第68-81页 |
| 4.1 CSP单独作用于PC12对细胞增殖毒性的影响 | 第68-69页 |
| 4.2 CSP对H_2O_2损伤PC12细胞活力的影响 | 第69-70页 |
| 4.3 Hoechst33258染色分析CSP对H_2O_2诱导PC12细胞凋亡的影响 | 第70页 |
| 4.4 CSP对H_2O_2诱导PC12细胞周期的影响 | 第70-72页 |
| 4.5 AnnexinV-FITC/PI检测凋亡 | 第72-74页 |
| 4.6 CSP对H_2O_2导致的细胞内8-OHdG水平的影响 | 第74-75页 |
| 4.7 CSP对H_2O_2导致的胞内ROS水平的影响 | 第75-76页 |
| 4.8 CSP对H_2O_2损伤PC12细胞外LDH漏出率的影响 | 第76-77页 |
| 4.9 CSP对H_2O_2诱导的线粒体膜电位的影响 | 第77-78页 |
| 4.10 CSP对H_2O_2诱导的细胞内钙离子浓度的影响 | 第78-79页 |
| 4.11 CSP对H_2O_2诱导的Caspase-3、Caspase-9酶活性的影响 | 第79-80页 |
| 4.12 CSP对H_2O_2诱导的细胞内SOD、GSH-Px酶活性和细胞外MDA水平的影响 | 第80-81页 |
| 5 讨论 | 第81-83页 |
| 6 小结 | 第83-84页 |
| 7 参考文献 | 第84-86页 |
| 第四章 本论文的主要结论 | 第86-87页 |
| 在硕士期间论文发表情况 | 第87-88页 |
| 致谢 | 第88页 |
