摘要 | 第5-6页 |
Abstract | 第6-7页 |
1 文献综述 | 第8-16页 |
1.1 镉的来源及危害 | 第8-9页 |
1.1.1 镉的来源 | 第8页 |
1.1.2 镉对植物的危害 | 第8-9页 |
1.1.3 镉对人体的危害 | 第9页 |
1.2 水稻植株对Cd的吸收和积累机制 | 第9-10页 |
1.2.1 根系对Cd~(2+)的吸收 | 第9-10页 |
1.2.2 质外体和共质体途径 | 第10页 |
1.2.3 根系木质部及韧皮部装载 | 第10页 |
1.3 植物对Cd的耐性机制研究 | 第10-13页 |
1.3.1 限制Cd进入植物体内 | 第10-11页 |
1.3.2 植物体内Cd鳌合和区室化 | 第11页 |
1.3.3 诱导抗逆蛋白或氨基酸合成 | 第11-12页 |
1.3.4 激活植物体内抗氧化防御系统 | 第12-13页 |
1.4 H_2O_2在植物体内的作用 | 第13-14页 |
1.5 蛋白质组学在植物逆境生理学中的应用 | 第14页 |
1.6 本课题研究目的和意义 | 第14-16页 |
2 材料与方法 | 第16-27页 |
2.1 材料 | 第16页 |
2.2 材料培养 | 第16页 |
2.3 实验设计与处理 | 第16-17页 |
2.4 测定项目及方法 | 第17-26页 |
2.4.1 丙二醛(MDA)含量测定 | 第17页 |
2.4.2 抗氧化酶活性测定 | 第17页 |
2.4.3 可溶性蛋白含量测定 | 第17-18页 |
2.4.4 自由基清除率测定 | 第18-19页 |
2.4.5 FRAP总抗氧化能力测定 | 第19-20页 |
2.4.6 总还原力测定 | 第20页 |
2.4.7 株高及生物量测定 | 第20-21页 |
2.4.8 植株Cd含量测定 | 第21页 |
2.4.9 Cd的亚细胞分布 | 第21页 |
2.4.10 双向电泳及差异蛋白质谱分析 | 第21-24页 |
2.4.11 荧光定量PCR(qPCR) | 第24-26页 |
2.5 数据处理 | 第26-27页 |
3 结果与分析 | 第27-49页 |
3.1 不同浓度H_2O_2对Cd胁迫下水稻幼苗生长的影响 | 第27-29页 |
3.1.1 不同浓度H_2O_2对Cd胁迫下水稻幼苗株高的影响 | 第27页 |
3.1.2 不同浓度H_2O_2对Cd胁迫下水稻生物量的影响 | 第27-29页 |
3.2 外源H_2O_2对Cd胁迫下水稻幼苗抗氧化能力的影响 | 第29-37页 |
3.2.1 外源H_2O_2对Cd胁迫下水稻幼苗MDA含量的影响 | 第29页 |
3.2.2 外源H_2O_2对Cd胁迫下水稻幼苗抗氧化酶活性的影响 | 第29-31页 |
3.2.3 外源H_2O_2对Cd胁迫下水稻幼苗可溶性蛋白含量的影响 | 第31-32页 |
3.2.4 外源H_2O_2对Cd胁迫下水稻自由基清除率和抗氧化能力的影响 | 第32-36页 |
3.2.5 外源H_2O_2对Cd胁迫下水稻植株FRAP的影响 | 第36页 |
3.2.6 外源H_2O_2对Cd胁迫下水稻植株总还原力的影响 | 第36-37页 |
3.3 外源H_2O_2对Cd胁迫下水稻植株Cd含量和分布的影响 | 第37-39页 |
3.3.1 外源H_2O_2处理对水稻植株Cd含量和积累量的影响 | 第37-38页 |
3.3.2 外源H_2O_2处理对水稻植株亚细胞Cd含量的影响 | 第38-39页 |
3.3.3 外源H_2O_2处理对水稻植株中Cd亚细胞分布的影响 | 第39页 |
3.4 外源H_2O_2对Cd胁迫下水稻根系差异蛋白图谱分析 | 第39-46页 |
3.4.1 差异蛋白图谱的构建与比较分析 | 第39-43页 |
3.4.2 差异蛋白MALDI-TOF-TOFMS鉴定与分析 | 第43-46页 |
3.5 外源H_2O_2对Cd胁迫下水稻幼苗根系候选差异蛋白基因表达的影响 | 第46-49页 |
3.5.1 RNA样品的质量检测 | 第46-47页 |
3.5.2 候选基因qPCR结果分析 | 第47-49页 |
3 讨论 | 第49-54页 |
3.1 外源H_2O_2预处理对Cd胁迫下水稻幼苗抗氧化能力的影响 | 第49-50页 |
3.2 外源H_2O_2预处理对水稻Cd含量的影响 | 第50-52页 |
3.3 外源H_2O_2预处理对Cd胁迫下水稻响应蛋白质差异的影响 | 第52-54页 |
4 总结 | 第54-55页 |
参考文献 | 第55-63页 |
致谢 | 第63-64页 |
附录 | 第64-65页 |