半乳糖化胆固醇配体脂质体材料的酶促构建及其肝靶向性研究
| 摘要 | 第3-7页 |
| Abstract | 第7-11页 |
| 目录 | 第12-15页 |
| 引言 | 第15-17页 |
| 第一章 文献研究 | 第17-29页 |
| 一 脂质体 | 第17-20页 |
| 1.1 概述 | 第17页 |
| 1.2 脂质体的制备方法 | 第17-19页 |
| 1.3 受体介导的肝靶向脂质体 | 第19-20页 |
| 二 半乳糖配体分子的合成研究 | 第20-27页 |
| 2.1 半乳糖配体分子的化学合成研究 | 第20-22页 |
| 2.2 半乳糖配体分子的酶法合成研究 | 第22-27页 |
| 三 本课题研究的目的和意义 | 第27-29页 |
| 第二章 酶促合成硬脂酸半乳糖酯 | 第29-40页 |
| 一 仪器与材料 | 第29-30页 |
| 1.1 仪器 | 第29页 |
| 1.2 材料 | 第29-30页 |
| 二 实验方法 | 第30-36页 |
| 2.1 有机溶剂的脱水 | 第30页 |
| 2.2 酶的活力测定 | 第30页 |
| 2.3 GAL-C18酶促合成 | 第30页 |
| 2.4 酶促合成条件的单因素考察 | 第30-32页 |
| 2.5 产物纯化处理 | 第32页 |
| 2.6 产物结构表征 | 第32-34页 |
| 2.7 酯化率计算方法 | 第34-36页 |
| 三 结果与讨论 | 第36-39页 |
| 3.1 不同来源酶对酯化反应的影响 | 第36页 |
| 3.2 反应介质对酯化反应的影响 | 第36-37页 |
| 3.3 酶量对酯化反应的影响 | 第37页 |
| 3.4 底物摩尔比对酯化反应的影响 | 第37-38页 |
| 3.5 反应温度对酯化反应的影响 | 第38页 |
| 3.6 反应时间对酯化反应的影响 | 第38页 |
| 3.7 最优反应条件验证 | 第38-39页 |
| 四 小结 | 第39-40页 |
| 第三章 CHS-SE-LA配体分子酶促合成 | 第40-74页 |
| 一 仪器与材料 | 第40-41页 |
| 1.1 仪器 | 第40-41页 |
| 1.2 材料 | 第41页 |
| 1.3 酰基供体的制备 | 第41页 |
| 二 CHS-SE酶促合成 | 第41-57页 |
| (一) 实验方法 | 第42-47页 |
| (二) 结果与讨论 | 第47-57页 |
| (三) 小结 | 第57页 |
| 三 CHS-SE-LA的酶促合成 | 第57-74页 |
| (一) 实验方法 | 第57-63页 |
| (二) 结果与论论 | 第63-73页 |
| (三) 小结 | 第73-74页 |
| 第四章 半乳糖配体脂质体的制备及体内药动学研究 | 第74-88页 |
| 一 仪器与材料 | 第74页 |
| 1.1 仪器 | 第74页 |
| 1.2 材料 | 第74页 |
| 二 脂质体的制备 | 第74-82页 |
| (一) 方法与结果 | 第74-82页 |
| (二) 讨论 | 第82页 |
| 三 半乳糖配体脂质体药代动力学研究 | 第82-87页 |
| (一) 方法与结果 | 第82-86页 |
| (三) 讨论 | 第86-87页 |
| 四 本章小结 | 第87-88页 |
| 第五章 半乳糖配体脂质体外靶向性研究 | 第88-96页 |
| 一 仪器与试药 | 第88-89页 |
| 1.1 实验仪器 | 第88页 |
| 1.2 材料 | 第88页 |
| 1.3 细胞株 | 第88页 |
| 1.4 配体分子 | 第88-89页 |
| 二 方法与结果 | 第89-93页 |
| 2.1 脂质体的制备 | 第89-90页 |
| 2.2 NBD荧光的测定 | 第90-91页 |
| 2.3 精密度与回收率的测定 | 第91页 |
| 2.4 脂质体荧光标记率的测定 | 第91-92页 |
| 2.5 HepG2细胞对脂质体摄取实验 | 第92-93页 |
| 三 讨论 | 第93-95页 |
| 四 小结 | 第95-96页 |
| 结语 | 第96-97页 |
| 本文的创新之处 | 第97页 |
| 展望 | 第97-98页 |
| 参考文献 | 第98-108页 |
| 附录 | 第108-118页 |
| 在校期间发表论文情况 | 第118-119页 |
| 致谢 | 第119-120页 |
| 附件 | 第120页 |
