| 中文摘要 | 第4-6页 |
| Abstract | 第6-7页 |
| 缩略表 | 第8-9页 |
| 目录 | 第9-13页 |
| 第一章 文献综述 | 第13-39页 |
| 1 生物体中感受蛋白概述 | 第13-22页 |
| 1.1 信号转导中的受体蛋白 | 第13-15页 |
| 1.1.1 G蛋白偶联受体 | 第13-14页 |
| 1.1.2 酶联受体 | 第14-15页 |
| 1.1.3 离子通道偶联受体 | 第15页 |
| 1.2 生物体中早期信号的感应 | 第15-22页 |
| 1.2.1 动物细胞中的TRP离子通道 | 第15-21页 |
| 1.2.2 植物对渗透势胁迫的感应 | 第21-22页 |
| 2 植物响应渗透势胁迫的信号传导机制 | 第22-29页 |
| 2.1 植物的渗透势胁迫 | 第22页 |
| 2.2 胁迫信号转导途径概论 | 第22-24页 |
| 2.3 植物渗透势信号胁迫转导途径 | 第24-29页 |
| 2.3.1 渗透势胁迫激活的中蛋白激酶 | 第25-26页 |
| 2.3.2 ABA依赖和ABA非依赖信号转导途径 | 第26-29页 |
| 3 植物体中的钙信号 | 第29-37页 |
| 3.1 植物体中的钙离子 | 第29-30页 |
| 3.2 Calcium Signatures | 第30-32页 |
| 3.2.1 钙信号成像 | 第30-31页 |
| 3.2.2 Calcium Signatures的作用 | 第31-32页 |
| 3.3 定位于细胞质膜和胞质内膜的钙离子转运体 | 第32-37页 |
| 3.3.1 介导钙离子外排的钙转运体 | 第32-34页 |
| 3.3.2 介导钙离子内流的钙转运体 | 第34-37页 |
| 4 本论文的研究目的和意义 | 第37-39页 |
| 第二章 用钙成像的方法表达克隆AtCSC1 | 第39-56页 |
| 1 引言 | 第39-40页 |
| 2 材料和方法 | 第40-44页 |
| 2.1 实验材料 | 第40-41页 |
| 2.1.1 菌株 | 第40页 |
| 2.1.2 克隆质粒 | 第40页 |
| 2.1.3 动物细胞系 | 第40页 |
| 2.1.4 培养基、试剂及主要仪器 | 第40-41页 |
| 2.2 实验方法 | 第41-44页 |
| 2.2.1 拟南芥幼苗RNA的提取及逆转录PCR | 第41-42页 |
| 2.2.2 基因克隆及质粒构建 | 第42页 |
| 2.2.3 动物细胞转染 | 第42-44页 |
| 3 实验结果 | 第44-54页 |
| 3.1 AtCSC1蛋白在高渗刺激下介导细胞内钙离子浓度升高 | 第44-47页 |
| 3.2 AtCSC1介导胞外钙离子内流,且对冷和热刺激不起反应 | 第47-50页 |
| 3.3 CSCs家族蛋白具有功能保守性 | 第50-54页 |
| 4 讨论 | 第54-56页 |
| 第三章 电生理学实验方法研究CSCs蛋白的功能 | 第56-72页 |
| 1 引言 | 第56-57页 |
| 2 材料和方法 | 第57-60页 |
| 2.1 实验材料 | 第57页 |
| 2.1.1 质粒载体 | 第57页 |
| 2.1.2 动物材料 | 第57页 |
| 2.1.3 培养基、试剂及主要仪器 | 第57页 |
| 2.2 实验方法 | 第57-60页 |
| 2.2.1 体外合成Capping RNA | 第57-58页 |
| 2.2.2 获取非洲爪蟾卵母细胞 | 第58页 |
| 2.2.3 mRNA的微注射 | 第58页 |
| 2.2.4 双电极电压钳记录信号 | 第58-60页 |
| 3 实验结果 | 第60-70页 |
| 3.1 拟南芥AtCSC1,人HsTM63C和酵母ScYLR241W在高渗刺激下产生内向电流 | 第60-62页 |
| 3.2 AtCSC1是高渗激活的非选择性阳离子通道 | 第62-66页 |
| 3.3 AtCSC1通道活性受胞外钙离子影响,具有非整流的瞬时激发的电生理特性 | 第66-70页 |
| 4 讨论 | 第70-72页 |
| 第四章 拟南芥CSCs基因的表达模式及突变体的获得 | 第72-94页 |
| 1 引言 | 第72-73页 |
| 2 材料和方法 | 第73-78页 |
| 2.1 实验材料 | 第73页 |
| 2.1.1 植物材料及菌株 | 第73页 |
| 2.1.2 质粒载体 | 第73页 |
| 2.1.3 培养基 | 第73页 |
| 2.2 实验方法 | 第73-78页 |
| 2.2.1 植物基因组提取 | 第73-74页 |
| 2.2.2 农杆菌感受态细胞的制备及转化 | 第74-75页 |
| 2.2.3 拟南芥的转化和阳性植物的筛选 | 第75-76页 |
| 2.2.4 GUS染色 | 第76页 |
| 2.2.5 农杆菌侵染转化烟草叶片 | 第76-77页 |
| 2.2.6 双引物法鉴定T-DNA插入突变体 | 第77-78页 |
| 3 实验结果 | 第78-92页 |
| 3.1 拟南芥CSCs家族基因广泛分布在各种组织中 | 第78-89页 |
| 3.1.1 拟南芥CSC1基因的表达模式及亚细胞定位 | 第78-80页 |
| 3.1.2 拟南芥CSC2基因的表达模式 | 第80-81页 |
| 3.1.3 拟南芥CSC3基因的表达模式 | 第81-82页 |
| 3.1.4 拟南芥CSC4基因的表达模式 | 第82-83页 |
| 3.1.5 拟南芥CSC5基因的表达模式 | 第83-84页 |
| 3.1.6 拟南芥CSC6基因的表达模式 | 第84-85页 |
| 3.1.7 拟南芥CSC8基因的表达模式 | 第85-86页 |
| 3.1.8 拟南芥CSC10基因的表达模式 | 第86-87页 |
| 3.1.9 拟南芥CSC11基因的表达模式 | 第87-88页 |
| 3.1.10 拟南芥CSC14基因的表达模式 | 第88-89页 |
| 3.2 拟南芥CSCs家族基因T-DNA突变体的获得 | 第89-90页 |
| 3.3 拟南芥CSC1基因突变体表型初步分析 | 第90-92页 |
| 4 讨论 | 第92-94页 |
| 第五章 结论与展望 | 第94-96页 |
| 参考文献 | 第96-105页 |
| 攻读博士学位期间发表的论文目录 | 第105-106页 |
| 致谢 | 第106-108页 |
