摘要 | 第4-11页 |
Abstract | 第11-20页 |
中英文缩略词 | 第25-26页 |
引言 | 第26-29页 |
第一部分: 胃腺癌非炎症性血清标志物的筛选、鉴定及验证 | 第29-61页 |
1 前言 | 第29页 |
2 材料与方法 | 第29-38页 |
2.1 材料 | 第30-34页 |
2.1.1 临床资料 | 第30-32页 |
2.1.2 血清样本采集 | 第32页 |
2.1.3 主要仪器及试剂 | 第32-33页 |
2.1.4 常用试剂配制 | 第33-34页 |
2.2 方法 | 第34-38页 |
2.2.1 实验方法 | 第34-38页 |
2.2.2 数据处理及统计学方法 | 第38页 |
3 结果 | 第38-50页 |
3.1 胃癌血清中非炎症性差异性标志物的筛选 | 第39-44页 |
3.2 判别模型盲法验证 | 第44-47页 |
3.3 胃癌血清中差异性蛋白质的分离纯化及MALDI-TOF-MS验证 | 第47页 |
3.4 MALDI-TOF/TOF MS鉴定m/z 6449 Da蛋白 | 第47页 |
3.5 胃癌血清及组织中目标差异性标志物的验证 | 第47-48页 |
3.6 M/z 6449 Da蛋白胃癌诊断及预后效能评估 | 第48-50页 |
4 讨论 | 第50-53页 |
5 小结 | 第53-54页 |
参考文献 | 第54-61页 |
第二部分: M/z 6449 Da蛋白多肽对胃腺癌的生物功能探究 | 第61-116页 |
1 前言 | 第61-63页 |
2 材料与方法 | 第63-80页 |
2.1 材料 | 第63-65页 |
2.1.1 细胞系及动物 | 第63页 |
2.1.2 主要仪器及试剂 | 第63-65页 |
2.2 方法 | 第65-80页 |
2.2.1 实验方法 | 第65-80页 |
2.2.2 统计学分析 | 第80页 |
3 结果 | 第80-104页 |
3.1 多肽性能结构预测及合成 | 第80-85页 |
3.2 体外实验 | 第85-97页 |
3.2.1 细胞生长曲线及细胞毒性分析 | 第85-87页 |
3.2.2 EdU检测WSGC肽干预细胞增殖系数变化 | 第87-88页 |
3.2.3 Caspase-3/7及PI-Annexin V双染法检测WSGC肽干预细胞凋亡 | 第88-89页 |
3.2.4 WSGC肽对细胞跨膜侵袭及迁移能力的影响 | 第89-91页 |
3.2.5 WSGC肽干预后细胞周期的变化 | 第91-92页 |
3.2.6 FITC标记的WSGC肽在胃腺癌细胞中的定位 | 第92-94页 |
3.2.7 QRT-PCR检测细胞增殖、凋亡及NOTCH信号通路关键因子mRNA表 | 第94-96页 |
3.2.8 Western blot检测细胞增殖、凋亡及NOTCH信号通路关键因子蛋白表达 | 第96-97页 |
3.3 体内实验 | 第97-104页 |
3.3.1 WSGC肽干预胃腺癌荷瘤免疫缺陷小鼠模型 | 第98-100页 |
3.3.2 荷瘤小鼠模型瘤体组织TUNEL检测凋亡分析 | 第100-102页 |
3.3.3 荷瘤小鼠模型瘤体组织免疫组化分析 | 第102-104页 |
4 讨论 | 第104-109页 |
5 小结 | 第109-110页 |
参考文献 | 第110-116页 |
结论 | 第116-117页 |
综述: 胃癌靶向治疗与Notch信号通路研究进展 | 第117-130页 |
1 前言 | 第117-118页 |
2 Notch信号通路的激活与调节 | 第118页 |
3 Notch信号通路关键组件在胃上皮组织中的表达 | 第118-119页 |
3.1 Notch信号通路关键组件在正常胃上皮组织中的表达 | 第118-119页 |
3.2 Notch信号通路关键组件在胃癌上皮组织中的表达 | 第119页 |
4 Notch信号通路与胃癌的发生发展 | 第119-120页 |
5 Notch信号通路在胃癌治疗中的价值 | 第120-123页 |
5.1 干扰NICD产生及释放 | 第121-122页 |
5.2 隔断Notch受体与配体结合 | 第122页 |
5.3 中断或干扰共激活剂复合物形成及信号下游传导 | 第122-123页 |
6 展望 | 第123页 |
参考文献 | 第123-130页 |
个人简历及在学期间代表性科研成果 | 第130-133页 |
致谢 | 第133页 |