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FMO2通过结合CYP2J3减轻心梗后SMAD2/3磷酸化介导的心脏纤维化

致谢第5-6页
中文摘要第6-8页
Abstract第8-10页
缩略词表第11-14页
1 引言第14-16页
2 实验材料第16-22页
    2.1 实验动物第16页
    2.2 实验仪器第16-17页
    2.3 实验试剂第17-22页
3 实验方法第22-36页
    3.1 细胞及心脏样本的收集第22页
    3.2 Western Blot第22-24页
    3.3 细胞及细胞培养条件第24-25页
    3.4 病毒的构建第25-30页
    3.5 细胞转染第30页
    3.6 组织学分析第30-31页
    3.7 细胞免疫荧光染色第31-32页
    3.8 大鼠心脏超声第32页
    3.9 荧光定量PCR第32-34页
    3.10 蛋白质免疫共沉淀(Co-IP)第34-35页
    3.11 统计学方法第35-36页
4 结果第36-58页
    4.1 FMO2在人,大鼠和小鼠以及食蟹猴心梗后被显著下调第36-37页
    4.2 FMO2在组织和细胞中的表达差异第37-38页
    4.3 大鼠心梗后过表达FMO2能显著改善心脏功能第38-40页
    4.4 大鼠心梗后过表达FMO2能显著减少心梗后的纤维化第40-42页
    4.5 大鼠心梗后在非心肌细胞中靶向过表达FMO2亦能减轻心梗后的纤维化以及改善心功能第42-45页
    4.6 大鼠成体干扰FMO2表达能一定程度降低心功能以及增加纤维化第45-47页
    4.7 FMO2-/-大鼠心功能显著下降,并伴有纤维化增多第47-48页
    4.8 在FMO2-/-的大鼠中补偿非心肌细胞特异性的FMO2过表达病毒能显著改善FMO2-/-大鼠的心功能第48-50页
    4.9 体外模型的选择和建立以及依据第50-51页
    4.10 FMO2过表达能在被TGF-β刺激以后减少NRCF的纤维化基因表达第51-52页
    4.11 FMO2-/-大鼠的心脏成纤维细胞相对于正常SD大鼠的心脏成纤维细胞具有显著升高的纤维化特性第52-53页
    4.12 FMO2补偿能减轻心梗病人成纤维细胞的纤维化表象第53-54页
    4.13 FMO2抑制心脏成纤维细胞转分化以及胶原沉积的机制探讨第54-55页
    4.14 FMO2通过与CYP2J3的结合来抑制SMAD2/3的磷酸化第55-56页
    4.15 CYP2J3是FMO2介导的抑制纤维化作用的必须因素第56-58页
5 讨论第58-61页
综述第61-106页
    参考文献第86-106页
申请者简历第106页

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