| 摘要 | 第4-7页 |
| Abstract | 第7-10页 |
| 英文缩略语 | 第11-18页 |
| 第一部分 ：α-烯醇化酶是自身免疫甲状腺炎中共存于甲状腺和脑组织中的一种自身抗原 | 第18-35页 |
| 1 前言 | 第18-19页 |
| 2 材料与方法 | 第19-29页 |
| 2.1 材料与试剂 | 第19-22页 |
| 2.1.1 实验动物 | 第19页 |
| 2.1.2 实验仪器 | 第19-20页 |
| 2.1.3 实验试剂 | 第20-22页 |
| 2.2 实验方法 | 第22-29页 |
| 2.2.1 制备小鼠源甲状腺球蛋白(mTg) | 第22页 |
| 2.2.2 mTg免疫诱导EAT | 第22-23页 |
| 2.2.3 标本收集与处理 | 第23页 |
| 2.2.4 甲状腺HE染色 | 第23-24页 |
| 2.2.5 小鼠血清抗Tg抗体(TgAb)和抗ENO1抗体(ENO1Ab)水平检测 | 第24页 |
| 2.2.6 WesternBlot蛋白免疫印迹 | 第24-27页 |
| 2.2.7 甲状腺与脑组织石蜡切片免疫组化染色 | 第27-28页 |
| 2.2.8 脑组织冰冻切片免疫荧光染色 | 第28-29页 |
| 2.2.9 统计学处理 | 第29页 |
| 3 结果 | 第29-33页 |
| 3.1 小鼠甲状腺HE染色及血清TgAb总IgG的水平 | 第29页 |
| 3.2 小鼠血清ENO1Ab总IgG及亚型表达的检测结果 | 第29-30页 |
| 3.3 正常甲状腺与脑组织中ENO1的表达情况 | 第30-31页 |
| 3.4 正常甲状腺和脑组织中ENO1表达的时期确定和细胞定位 | 第31-33页 |
| 3.4.1 ENO1表达的时期确定 | 第31页 |
| 3.4.2 ENO1表达的细胞定位 | 第31-33页 |
| 4 讨论 | 第33-34页 |
| 5 结论 | 第34-35页 |
| 第二部分 ：α-烯醇化酶诱发的自身免疫反应对成年CBA/J雌性小鼠甲状腺影响的实验研究 | 第35-56页 |
| 1 前言 | 第35页 |
| 2 材料与方法 | 第35-43页 |
| 2.1 材料与试剂 | 第35-38页 |
| 2.1.1 实验动物 | 第35-36页 |
| 2.1.2 实验仪器 | 第36-37页 |
| 2.1.3 实验试剂 | 第37-38页 |
| 2.2 实验方法 | 第38-43页 |
| 2.2.1 实验动物的分组和处理 | 第38页 |
| 2.2.2 标本收集与处理 | 第38-39页 |
| 2.2.3 小鼠血清ENO1Ab和TgAb水平的检测 | 第39页 |
| 2.2.4 甲状腺HE染色及炎症评分 | 第39-40页 |
| 2.2.5 免疫荧光染色 | 第40页 |
| 2.2.6 Real-TimePCR检测细胞因子mRNA的表达情况 | 第40-42页 |
| 2.2.7 小鼠血清TT4和TSH的测定 | 第42-43页 |
| 2.2.8 统计学处理 | 第43页 |
| 3 结果 | 第43-53页 |
| 3.1 小鼠血清ENO1Ab总IgG及其亚型水平的检测结果 | 第43-44页 |
| 3.2 脾组织中相关细胞因子mRNA表达的检测结果 | 第44-47页 |
| 3.3 甲状腺HE染色及炎症评分 | 第47-48页 |
| 3.4 甲状腺组织炎症浸润的相关免疫荧光染色结果 | 第48-50页 |
| 3.5 小鼠血清TgAb总IgG水平的检测结果 | 第50页 |
| 3.6 小鼠甲状腺内IgG沉积及CD16阳性细胞聚积的免疫荧光染色结果 | 第50-51页 |
| 3.7 小鼠甲状腺功能检测结果 | 第51-52页 |
| 3.8 甲状腺组织中CleavedCaspase-3的表达情况 | 第52-53页 |
| 4 讨论 | 第53-55页 |
| 5 结论 | 第55-56页 |
| 第三部分 ：α-烯醇化酶诱发的自身免疫反应对成年CBA/J雌性小鼠脑功能影响的实验研究 | 第56-81页 |
| 1 前言 | 第56-57页 |
| 2 材料与方法 | 第57-63页 |
| 2.1 材料与试剂 | 第57-60页 |
| 2.1.1 实验动物 | 第57页 |
| 2.1.2 实验仪器 | 第57-58页 |
| 2.1.3 实验试剂 | 第58-60页 |
| 2.2 实验方法 | 第60-63页 |
| 2.2.1 实验动物的分组和处理 | 第60页 |
| 2.2.2 标本收集与处理 | 第60页 |
| 2.2.3 MorrisWaterMaze(MWM)水迷宫实验 | 第60-61页 |
| 2.2.4 离体长时程增强(Long-termPotentiation,LTP)实验 | 第61页 |
| 2.2.5 透射扫描电子显微镜观察脑微血管的超微结构 | 第61-62页 |
| 2.2.6 WesternBlot蛋白免疫印迹 | 第62页 |
| 2.2.7 免疫荧光染色 | 第62-63页 |
| 2.2.8 蛋白质组微阵列试验 | 第63页 |
| 2.2.9 统计学处理 | 第63页 |
| 3 结果 | 第63-77页 |
| 3.1 Morris水迷宫实验结果 | 第63-64页 |
| 3.2 离体长时程增强(Long-termPotentiation)实验结果 | 第64-65页 |
| 3.3 小鼠大脑皮质及海马组织中微血管完整性的检测结果 | 第65-68页 |
| 3.4 小鼠大脑皮质及海马组织中小胶质细胞和星形胶质细胞活化的检测结果 | 第68-72页 |
| 3.5 小鼠脑组织中细胞因子表达水平的检测结果 | 第72-73页 |
| 3.6 导致小鼠脑功能受损的主要因素检测结果 | 第73-76页 |
| 3.7 小鼠大脑皮质及海马组织中IL-6,CDK-5和GSK-3β的表达水平 | 第76-77页 |
| 4 讨论 | 第77-80页 |
| 5 结论 | 第80-81页 |
| 本研究创新性的自我评价 | 第81-82页 |
| 参考文献 | 第82-89页 |
| 综述 | 第89-96页 |
| 参考文献 | 第93-96页 |
| 攻读学位期间取得的研究成果 | 第96-97页 |
| 致谢 | 第97-98页 |
| 个人简历 | 第98页 |
