中文摘要 | 第4-5页 |
abstract | 第5-6页 |
第一章 绪论 | 第10-25页 |
1.1 偶氮染料废水的研究进展 | 第10-14页 |
1.2 氧化还原介体的研究进展 | 第14-24页 |
1.2.1 催化机理 | 第15-19页 |
1.2.2 影响因素 | 第19-20页 |
1.2.3 分类 | 第20-22页 |
1.2.4 固定化介体 | 第22-24页 |
1.3 本课题研究目的及意义 | 第24-25页 |
第二章 AQS改性的磁性纳米粒子催化偶氮染料生物脱色性能研究 | 第25-42页 |
2.1 实验材料及仪器 | 第25-27页 |
2.1.1 菌种 | 第25页 |
2.1.2 实验仪器 | 第25-26页 |
2.1.3 培养基及其组成 | 第26页 |
2.1.4 化学试剂 | 第26-27页 |
2.2 实验方法 | 第27-31页 |
2.2.1 AQS改性的磁性纳米粒子(FeSi@AQS)的制备 | 第27-28页 |
2.2.2 菌体的活化与培养 | 第28页 |
2.2.3 FeSi@AQS催化偶氮染料生物脱色 | 第28-29页 |
2.2.4 FeSi@AQS催化偶氮染料生物脱色条件优化 | 第29-30页 |
2.2.5 FeSi@AQS催化偶氮染料生物脱色过程中ORP的测定 | 第30页 |
2.2.6 固定化介体分析测试方法 | 第30-31页 |
2.3 结果和讨论 | 第31-41页 |
2.3.1 FeSi@AQS的表征与分析 | 第31-34页 |
2.3.2 固定化介体催化效能与其结构相关性分析 | 第34-37页 |
2.3.3 固定化介体催化脱色过程中氧化还原电位变化 | 第37-39页 |
2.3.4 固定化介体催化脱色过程条件优化 | 第39-41页 |
2.4 本章小结 | 第41-42页 |
第三章 中性红改性水凝胶催化偶氮染料生物脱色性能研究 | 第42-53页 |
3.1 实验材料及仪器 | 第42-43页 |
3.1.1 菌种 | 第42页 |
3.1.2 实验仪器 | 第42-43页 |
3.1.3 培养基及其组成 | 第43页 |
3.1.4 化学试剂 | 第43页 |
3.2 实验方法 | 第43-46页 |
3.2.1 菌体的活化与培养 | 第43页 |
3.2.2 聚丙烯酸水凝胶(PAA)的合成 | 第43-44页 |
3.2.3 氧化还原介体中性红(NR)的固定化 | 第44页 |
3.2.4 固定化介体催化偶氮染料生物脱色 | 第44-45页 |
3.2.5 固定化介体催化偶氮染料生物脱色条件优化 | 第45页 |
3.2.6 固定化介体催化偶氮染料生物脱色过程中ORP的测定 | 第45页 |
3.2.7 固定化介体分析测试方法 | 第45-46页 |
3.3 结果和讨论 | 第46-52页 |
3.3.1 凝胶的性能研究 | 第46-47页 |
3.3.2 凝胶的表征 | 第47-48页 |
3.3.3 固定化介体催化效能 | 第48-50页 |
3.3.4 固定化介体催化脱色过程条件优化 | 第50-51页 |
3.3.5 固定化介体催化脱色过程中氧化还原电位变化 | 第51-52页 |
3.4 本章小结 | 第52-53页 |
第四章 PAA-NR催化偶氮染料生物脱色机理研究 | 第53-64页 |
4.1 实验材料及仪器 | 第53-54页 |
4.1.1 菌种 | 第53页 |
4.1.2 实验仪器 | 第53-54页 |
4.1.3 培养基及其组成 | 第54页 |
4.1.4 化学试剂 | 第54页 |
4.2 实验方法 | 第54-56页 |
4.2.1 电子传递链及其抑制剂 | 第54-55页 |
4.2.2 菌体的活化与培养 | 第55页 |
4.2.3 PAA-NR的固定方法 | 第55页 |
4.2.4 探究不同抑制剂对PAA-NR脱色体系电子传递的影响 | 第55-56页 |
4.3 结果和讨论 | 第56-63页 |
4.3.1 电子传递抑制剂对脱色过程的影响 | 第56-62页 |
4.3.2 PAA-NR体系偶氮染料生物脱色的电子传递机制 | 第62-63页 |
4.4 本章小结 | 第63-64页 |
第五章 结论与展望 | 第64-66页 |
5.1 主要结论 | 第64-65页 |
5.2 主要创新点 | 第65页 |
5.3 展望 | 第65-66页 |
参考文献 | 第66-73页 |
致谢 | 第73-74页 |
发表论文和参加科研情况说明 | 第74-75页 |