印度南瓜（Cucurbita maxima）长短蔓SSR分子标记的研究
| 中文摘要 | 第4-6页 |
| Abstract | 第6-7页 |
| 第1章 绪论 | 第11-26页 |
| 1.1 南瓜概述 | 第11-13页 |
| 1.1.1 南瓜的起源和分类 | 第11页 |
| 1.1.2 南瓜的生物学特征 | 第11-12页 |
| 1.1.3 南瓜的成分和应用价值 | 第12-13页 |
| 1.2 分子标记技术的应用 | 第13-16页 |
| 1.2.1 分子标记的种类及其特点 | 第14-15页 |
| 1.2.2 SSR分子标记 | 第15-16页 |
| 1.3 植株矮化的研究 | 第16-20页 |
| 1.3.1 植株矮化的获得 | 第16-18页 |
| 1.3.2 植物矮化遗传学研究 | 第18页 |
| 1.3.3 植物矮化与激素的关系 | 第18-20页 |
| 1.4 南瓜短蔓性状的研究进展 | 第20-22页 |
| 1.5 SSR分子标记作物基因 | 第22-23页 |
| 1.5.1 SSR分子标记群体的构建 | 第22-23页 |
| 1.6 相关关系及相关分析概念 | 第23页 |
| 1.7 本研究的目的与意义 | 第23-25页 |
| 1.8 本研究的技术路线 | 第25-26页 |
| 第2章 材料与方法 | 第26-33页 |
| 2.1 试验材料 | 第26-28页 |
| 2.1.1 供试材料和分析群体 | 第26-27页 |
| 2.1.2 主要试剂与仪器 | 第27-28页 |
| 2.2 试验方法 | 第28-33页 |
| 2.2.1 田间试验与性状考察 | 第28页 |
| 2.2.2 基因组DNA的提取 | 第28-29页 |
| 2.2.3 DNA提取物纯度的检测及其浓度的计算 | 第29页 |
| 2.2.4 SSR-PCR反应体系的建立 | 第29-30页 |
| 2.2.5 SSR标记分析方法 | 第30-32页 |
| 2.2.6 电泳数据的统计与分析 | 第32-33页 |
| 第3章 结果与分析 | 第33-47页 |
| 3.1 印度南瓜短蔓1820的特征及表现 | 第33页 |
| 3.2 印度南瓜遗传规律统计 | 第33-37页 |
| 3.2.1 印度南瓜供试亲本遗传规律分析 | 第34页 |
| 3.2.2 印度南瓜F1群体遗传规律分析 | 第34-35页 |
| 3.2.3 印度南瓜F2群体遗传规律分析 | 第35-37页 |
| 3.3 基因组DNA检测 | 第37-38页 |
| 3.3.1 琼脂糖电泳检测基因组DNA的提取结果 | 第37页 |
| 3.3.2 紫外分光光度计检测结果 | 第37-38页 |
| 3.4 多态性SSR引物筛选结果 | 第38-40页 |
| 3.5 筛选的SSR引物标记分析F2代群体 | 第40-47页 |
| 3.5.1 SSR引物标记F2代群体 | 第40-41页 |
| 3.5.2 SSR引物标记F2代电泳的统计结果 | 第41-46页 |
| 3.5.3 短蔓与分子标记之间的相关性分析 | 第46-47页 |
| 第4章 讨论 | 第47-50页 |
| 4.1 印度南瓜短蔓材料的遗传规律 | 第47页 |
| 4.2 印度南瓜短蔓性状基因的定位群体的选择 | 第47页 |
| 4.3 SSR分子标记的可行性 | 第47-48页 |
| 4.4 分离群体分组分析法(BSA)的应用 | 第48页 |
| 4.5 短蔓性状与分子标记的相关关系 | 第48-49页 |
| 4.6 创新 | 第49-50页 |
| 第5章 结论 | 第50-51页 |
| 参考文献 | 第51-59页 |
| 致谢 | 第59页 |
