| 摘要 | 第6-7页 |
| Abstract | 第7-8页 |
| 缩略词 | 第9-12页 |
| 第一章 文献综述 | 第12-23页 |
| 1.1 猪抗病育种研究现状 | 第12-13页 |
| 1.2 DNA甲基化研究 | 第13-18页 |
| 1.2.1 CpG岛 | 第15页 |
| 1.2.2 DNA甲基化对基因转录的调控 | 第15-16页 |
| 1.2.3 DNA甲基化与疾病研究 | 第16-17页 |
| 1.2.4 DNA甲基化的检测方法 | 第17-18页 |
| 1.3 外周单核细胞 | 第18-19页 |
| 1.4 Poly Ⅰ：C在免疫学研究中的应用 | 第19-20页 |
| 1.5 畜禽转录组学研究 | 第20-21页 |
| 1.5.1 RNA-seq技术在转录组学研究中的优势 | 第20-21页 |
| 1.5.2 RNA-seq在畜禽转录学研究中的应用 | 第21页 |
| 1.6 本研究的目的和意义 | 第21-23页 |
| 第二章 Poly Ⅰ：C诱导猪PBMCs转录组研究 | 第23-42页 |
| 2.1 材料与方法 | 第23-30页 |
| 2.1.1 试验材料 | 第23-24页 |
| 2.1.2 试验方法 | 第24-30页 |
| 2.2 结果与分析 | 第30-39页 |
| 2.2.1 PBMCs Poly Ⅰ：C免疫刺激预试验 | 第30-33页 |
| 2.2.2 PBMCs Poly Ⅰ：C免疫刺激试验 | 第33-39页 |
| 2.3 讨论 | 第39-40页 |
| 2.4 小结 | 第40-42页 |
| 第三章 Poly Ⅰ：C诱导猪PBMCs全基因组DNA甲基化研究 | 第42-61页 |
| 3.1 材料与方法 | 第42-48页 |
| 3.1.1 试验材料 | 第42-43页 |
| 3.1.2 试验方法 | 第43-48页 |
| 3.2 结果与分析 | 第48-58页 |
| 3.2.1 PBMCs基因组DNA提取结果 | 第48-49页 |
| 3.2.2 PBMCs甲基化测序数据统计 | 第49-50页 |
| 3.2.3 全基因组甲基化水平分析 | 第50-53页 |
| 3.2.4 差异甲基化区域检测 | 第53-54页 |
| 3.2.5 差异甲基化区域Bisulfite测序验证 | 第54页 |
| 3.2.6 DMR功能特征分析 | 第54-56页 |
| 3.2.7 DNA甲基化与基因转录调控 | 第56-57页 |
| 3.2.8 差异甲基化差异表达基因分析 | 第57-58页 |
| 3.3 讨论 | 第58-59页 |
| 3.4 小结 | 第59-61页 |
| 第四章 PACSIN1基因功能鉴定及启动子甲基化功能研究 | 第61-75页 |
| 4.1 材料与方法 | 第61-70页 |
| 4.1.1 试验材料 | 第61-62页 |
| 4.1.2 试验方法 | 第62-70页 |
| 4.2 试验结果与分析 | 第70-73页 |
| 4.2.1 CpG甲基转移酶处理的重组质粒甲基化完整性检测 | 第70-71页 |
| 4.2.2 甲基化对启动子转录活性的影响 | 第71页 |
| 4.2.3 PACSIN1基因siRNA转染效率评价 | 第71-72页 |
| 4.2.4 PACSIN1基因沉默对免疫相关基因表达的影响 | 第72-73页 |
| 4.3 讨论 | 第73-74页 |
| 4.4 小结 | 第74-75页 |
| 第五章 结论 | 第75-76页 |
| 5.1 主要结论 | 第75页 |
| 5.2 下一步研究工作 | 第75-76页 |
| 参考文献 | 第76-86页 |
| 致谢 | 第86-87页 |
| 附录 | 第87-101页 |
| 个人简历 | 第101-103页 |
