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营养压力条件下cMyc通过丝氨酸合成通路促进肿瘤的发生发展

摘要第5-6页
Abstract第6页
第一章 绪论第9-35页
    1.1 癌症研究进展第9-10页
    1.2 癌症以及肝癌第10-11页
    1.3 原癌基因与抑癌基因第11-20页
        1.3.1 原癌基因第12-20页
        1.3.2 抑癌基因第20页
    1.4 肿瘤细胞能量代谢异常第20-35页
        1.4.1 葡萄糖代谢第23-26页
        1.4.2 谷氨酰胺代谢第26-29页
        1.4.3 一碳代谢(丝/甘氨酸代谢)第29-31页
        1.4.4 cMyc与肿瘤代谢第31-35页
第二章 实验材料与方法第35-63页
    2.1 细胞培养与试剂第35页
    2.2 缺陷培养基的配制第35-38页
        2.2.1 各种营养缺陷培养基第35页
        2.2.2 各种营养物质第35-36页
        2.2.3 各种营养物质母液配制第36页
        2.2.4 细胞培养及实验过程试剂第36-37页
        2.2.5 细胞培养及实验过程所需实验仪器第37-38页
    2.3 Western blotting第38-43页
        2.3.1 准备蛋白样品(方法适用于贴壁粘附细胞)第38-39页
        2.3.2 转膜(针对湿转)第39页
        2.3.3 抗体敷育及显影第39-40页
        2.3.4 免疫印迹相关buffer配制第40-43页
    2.4 荧光实时定量PCR第43-46页
        2.4.1 Total RNA的提取第43-44页
        2.4.2 第一链cDNA的合成第44-45页
        2.4.3 PCR或者qPCR反应第45-46页
    2.5 胶回收、PCR产物纯化及质粒构建第46-47页
    2.6 感受态细胞的制备以及外源DNA的转化第47-48页
    2.7 质粒DNA小量抽提第48-50页
    2.8 质粒DNA转染(病毒包装及感染)第50-51页
    2.9 ChIP第51-53页
    2.10 谷胱甘肽水平检测第53-54页
    2.11 还原型与氧化型谷胱甘肽比例检测第54-57页
    2.12 细胞周期检测第57-58页
    2.13 细胞凋亡检测第58页
    2.14 细胞ROS检测第58-59页
    2.15 NMR检测~(13)C标记的代谢物第59-61页
    2.16 动物实验第61页
    2.17 临床样本检测与分析第61页
    2.18 免疫组化(1mmunohistochemistry)第61页
    2.19 数据处理第61-63页
第三章 实验结果第63-91页
    3.1 营养缺失条件下代谢通路的活化可以激活丝氨酸从头合成通路第63-66页
    3.2 cMyc在转录水平激活参与丝氨酸从头合成通路代谢酶的表达第66-72页
    3.3 cMyc介导的PSPH的表达以及丝氨酸代谢通路的活化通过调节细胞内GSH、ROS、凋亡、核苷酸的合成来维持细胞增殖第72-78页
    3.4 cMyc和PSPH对营养压力条件下肿瘤细胞的生长至关重要第78-81页
    3.5 PSPH在cMyc发挥体内外成瘤过程中起着重要的作用第81-84页
    3.6 临床上HCC中异常表达的PSPH预示较差的预后第84-86页
    3.7. 讨论第86-91页
附录第91-99页
参考文献第99-115页
致谢第115-116页
在读期间发表的学术论文与取得的研究成果第116页

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