| 摘要 | 第1-7页 |
| ABSTRACT | 第7-12页 |
| 第一章 文献综述 | 第12-22页 |
| ·国内外研究现状 | 第12-20页 |
| ·传染性海绵状脑病概述 | 第12-13页 |
| ·朊蛋白的结构及生物学特点 | 第13-14页 |
| ·朊蛋白疾病发病机制的研究进展 | 第14-15页 |
| ·PrP106-126 肽段的应用 | 第15-16页 |
| ·Prion 疾病相关细胞因子 | 第16-18页 |
| ·NF-κB 研究进展 | 第18-20页 |
| ·研究的目的与意义 | 第20-21页 |
| ·本研究要解决的问题 | 第21-22页 |
| 第二章 PRP106-126 激活NF-ΚB 信号通路的研究 | 第22-30页 |
| 前言 | 第22页 |
| ·材料 | 第22-25页 |
| ·多肽与细胞 | 第22页 |
| ·主要试剂 | 第22-23页 |
| ·主要溶液配制 | 第23-24页 |
| ·主要仪器 | 第24-25页 |
| ·方法 | 第25-27页 |
| ·Ana-1 细胞的复苏、培养与传代 | 第25页 |
| ·Ana-1 细胞NF-κB 的激活检测 | 第25-27页 |
| ·结果 | 第27-28页 |
| ·Western-blot 检测NF-κB P65 蛋白的表达 | 第27-28页 |
| ·免疫荧光试验检测NF-κB 核转运 | 第28页 |
| ·讨论 | 第28页 |
| ·小结 | 第28-30页 |
| 第三章 朊病相关细胞因子标准质粒的构建 | 第30-43页 |
| 前言 | 第30页 |
| ·材料 | 第30-33页 |
| ·细胞和多肽 | 第30页 |
| ·宿主菌和载体 | 第30页 |
| ·实验用酶 | 第30页 |
| ·主要试剂 | 第30-31页 |
| ·实验用液体配制 | 第31-32页 |
| ·主要仪器设备 | 第32-33页 |
| ·分析软件 | 第33页 |
| ·方法 | 第33-36页 |
| ·Ana-1 细胞的复苏、培养与传代 | 第33页 |
| ·细胞样品的处理 | 第33页 |
| ·Ana-1 细胞总RNA 的提取及cDNA 的合成 | 第33-34页 |
| ·引物设计及PCR 扩增 | 第34-35页 |
| ·质粒制备及鉴定 | 第35-36页 |
| ·结果 | 第36-41页 |
| ·IL-1β、TNF-α、IL-6 、iNOS 和β-actin 基因片段的扩增 | 第36-37页 |
| ·质粒的鉴定 | 第37-41页 |
| ·讨论 | 第41页 |
| ·小结 | 第41-43页 |
| 第四章 PRP106-126 与鼠巨噬细胞作用机制的研究 | 第43-51页 |
| 前言 | 第43页 |
| ·材料 | 第43-44页 |
| ·细胞和多肽 | 第43页 |
| ·实验用酶 | 第43-44页 |
| ·主要试剂 | 第44页 |
| ·主要仪器设备 | 第44页 |
| ·方法 | 第44-45页 |
| ·Ana-1 细胞的复苏、培养与传代 | 第44页 |
| ·细胞样品的处理及分组 | 第44页 |
| ·细胞总RNA 的提取及cDNA 的合成 | 第44页 |
| ·IL-1β、TNF-α、IL-6 和iNOS 基因表达量检测 | 第44页 |
| ·数据分析 | 第44-45页 |
| ·结果 | 第45-50页 |
| ·IL-1β、TNF-α、IL-6 和iNOS 基因荧光定量RT-PCR 定量检测 | 第45-49页 |
| ·PrP106-126 对ANA-1 细胞基因表达水平的影响 | 第49页 |
| ·抑制NF-κB 使IL-1β、TNF-α、IL-6 和iNOS 的表达量降低 | 第49-50页 |
| ·讨论 | 第50页 |
| ·小结 | 第50-51页 |
| 结论 | 第51-52页 |
| 参考文献 | 第52-57页 |
| 附录 | 第57-63页 |
| 缩略词 | 第63-64页 |
| 致谢 | 第64-65页 |
| 作者简介 | 第65页 |
